| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-78页 |
| 1.1 背景介绍 | 第13页 |
| 1.2 荧光探针的结构与设计 | 第13-16页 |
| 1.2.1 荧光发色团 | 第14-15页 |
| 1.2.2 连接部分 | 第15-16页 |
| 1.2.3 识别基团 | 第16页 |
| 1.3 荧光探针的识别机理 | 第16-22页 |
| 1.3.1 光诱导电子转移（Photon-induced electron transfer，PET） | 第16-17页 |
| 1.3.2 分子内电荷转移（Intramolecular charge transfer，ICT） | 第17-19页 |
| 1.3.3 荧光共振能量转移（Fluorescence resonance energy transfer，FRET） | 第19-20页 |
| 1.3.4 激发态分子内质子转移（Excited-state intramolecular proton transfer，ESIPT） | 第20-21页 |
| 1.3.5 激基复合物和激基缔合物（Exciplex and excimer） | 第21页 |
| 1.3.6 聚集诱导发光（Aggregate-induced emission，AIE） | 第21页 |
| 1.3.7 碳氮双键异构化（C=N isomerization） | 第21-22页 |
| 1.4 荧光探针的研究进展 | 第22-66页 |
| 1.4.1 氧化性物种荧光探针 | 第22-38页 |
| 1.4.2 活性硫物种荧光探针 | 第38-50页 |
| 1.4.3 金属离子荧光探针 | 第50-54页 |
| 1.4.4 p H荧光探针 | 第54-66页 |
| 1.5 本论文的研究背景、工作内容和创新点 | 第66-69页 |
| 1.5.1 研究背景 | 第66-67页 |
| 1.5.2 工作内容 | 第67页 |
| 1.5.3 本论文的创新点 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-78页 |
| 第二章 次氯酸和半胱氨酸以及高半胱氨酸香豆素类荧光探针 | 第78-93页 |
| 2.1 引言 | 第78-79页 |
| 2.2 实验部分 | 第79-81页 |
| 2.2.1 实验试剂和仪器 | 第79页 |
| 2.2.2 活性氧和活性氮物种的制备 | 第79页 |
| 2.2.3 荧光量子产率测量 | 第79页 |
| 2.2.4 细胞成像实验 | 第79-80页 |
| 2.2.5 探针的合成与表征 | 第80-81页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第81-89页 |
| 2.3.1 探针CMOS的设计 | 第81-82页 |
| 2.3.2 探针CMOS的光谱性质 | 第82-83页 |
| 2.3.3 探针CMOS对次氯酸的响应 | 第83-84页 |
| 2.3.4 p H的影响和动力学的研究 | 第84-86页 |
| 2.3.5 选择性的研究 | 第86-87页 |
| 2.3.6 识别机理的研究 | 第87-88页 |
| 2.3.7 细胞荧光成像研究 | 第88-89页 |
| 2.4 本章小结 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-93页 |
| 第三章 内源性次氯酸双光子比率型荧光探针 | 第93-108页 |
| 3.1 引言 | 第93-94页 |
| 3.2 实验部分 | 第94-96页 |
| 3.2.1 实验试剂和仪器 | 第94页 |
| 3.2.2 荧光量子产率测量 | 第94页 |
| 3.2.3 细胞存活率分析 | 第94页 |
| 3.2.4 细胞成像实验 | 第94-95页 |
| 3.2.5 探针的合成与表征 | 第95-96页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第96-104页 |
| 3.3.1 探针OS-BC的设计 | 第96页 |
| 3.3.2 探针OS-BC对次氯酸的响应 | 第96-97页 |
| 3.3.3 稳定性和动力学的研究 | 第97-98页 |
| 3.3.4 pH的影响 | 第98-99页 |
| 3.3.5 选择性的研究 | 第99-100页 |
| 3.3.6 探针OS-BC对MPO/H2O2/Cl-系统形成的HOCl的响应 | 第100页 |
| 3.3.7 识别机理的研究 | 第100-103页 |
| 3.3.8 细胞毒性测试与荧光成像研究 | 第103-104页 |
| 3.4 本章小结 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-108页 |
| 第四章 香豆素类可逆型铜离子和硫离子荧光探针 | 第108-123页 |
| 4.1 引言 | 第108-109页 |
| 4.2 实验部分 | 第109-111页 |
| 4.2.1 主要试剂与仪器 | 第109页 |
| 4.2.2 紫外吸收光谱和荧光光谱实验 | 第109页 |
| 4.2.3 荧光量子产率计算 | 第109页 |
| 4.2.4 细胞毒性测试 | 第109-110页 |
| 4.2.5 细胞培养和激光共聚焦成像实验 | 第110页 |
| 4.2.6 探针CMOH的合成与表征 | 第110-111页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第111-120页 |
| 4.3.1 探针CMOH的设计 | 第111-112页 |
| 4.3.2 探针CMOH溶解度的研究 | 第112页 |
| 4.3.3 探针CMOH对Cu~(2+)识别的研究 | 第112-113页 |
| 4.3.4 探针CMOH选择性的研究 | 第113-114页 |
| 4.3.5 CMOH-Cu~(2+)对S~(2-)的识别 | 第114页 |
| 4.3.6 CMOH-Cu~(2+)选择性的研究 | 第114-115页 |
| 4.3.7 pH的影响 | 第115-116页 |
| 4.3.8 动力学和可逆性的研究 | 第116-117页 |
| 4.3.9 识别机理的研究 | 第117-118页 |
| 4.3.10 细胞毒性测试和荧光成像研究 | 第118-120页 |
| 4.4 本章小结 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-123页 |
| 第五章 喹啉类比率型pH荧光探针 | 第123-138页 |
| 5.1 引言 | 第123-124页 |
| 5.2 实验部分 | 第124-127页 |
| 5.2.1 实验仪器与试剂 | 第124页 |
| 5.2.2 探针DQPH的合成 | 第124-126页 |
| 5.2.3 光谱实验 | 第126页 |
| 5.2.4 荧光量子产率计算 | 第126-127页 |
| 5.2.5 pK_a值的计算 | 第127页 |
| 5.2.6 细胞毒性测试 | 第127页 |
| 5.2.7 细胞培养和共聚焦成像 | 第127页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第127-135页 |
| 5.3.1 探针DQPH的水溶性 | 第127-128页 |
| 5.3.2 探针DQPH的光谱性质 | 第128-129页 |
| 5.3.3 pKa值的检测 | 第129-130页 |
| 5.3.4 探针DQPH的选择性研究 | 第130-131页 |
| 5.3.5 光稳定性和响应时间的研究 | 第131页 |
| 5.3.6 探针循环性研究 | 第131-132页 |
| 5.3.7 探针响应机理研究 | 第132-133页 |
| 5.3.8 细胞毒性测试与荧光成像研究 | 第133-135页 |
| 5.4 本章小结 | 第135-136页 |
| 参考文献 | 第136-138页 |
| 第六章 总结与展望 | 第138-140页 |
| 6.1 工作总结 | 第138-139页 |
| 6.2 工作展望 | 第139-140页 |
| 附图 | 第140-163页 |
| 附表 | 第163-167页 |
| 攻读博士期间发表的论文 | 第167-168页 |
| 致谢 | 第168页 |
