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β-淀粉样蛋白聚集与纤维化的界面手性效应

中文摘要第5-7页
Abstract第7-9页
第1章 研究背景和意义第15-37页
    1.1 蛋白质构象病第15-16页
    1.2 阿兹海默氏症第16-22页
        1.2.1 阿兹海默氏症的特征第16-19页
        1.2.2 β-淀粉样蛋白假说第19-21页
        1.2.3 多肽淀粉样变性的基本过程第21-22页
    1.3 界面在蛋白或多肽淀粉样变性中的作用第22-29页
        1.3.1 界面亲疏水性对多肽淀粉样变性的影响第25-28页
        1.3.2 界面电荷对多肽淀粉样变性的影响第28-29页
    1.4 手性因素对生理学过程的意义第29-34页
        1.4.1 手性现象第29-30页
        1.4.2 手性在生命过程中的重要意义第30-31页
        1.4.3 界面手性对细胞在界面上行为的调控第31-32页
        1.4.4 界面手性对DNA分子在界面行为的调控第32-33页
        1.4.5 界面手性对蛋白分子在界面上行为的调控第33-34页
    1.5 本论文的设计思路与研究内容第34-37页
第2章 分子手性诱导Aβ(1-40)在平坦液固界面上选择性纤维化自组装第37-85页
    2.1 引言第37-39页
    2.2 实验部分第39-53页
        2.2.1 实验原料与试剂第39-41页
        2.2.2 测试表征与仪器第41-42页
        2.2.3 手性界面的制备第42-44页
        2.2.4 Aβ(1-40)单体的前处理第44页
        2.2.5 原子力显微镜(AFM)表征蛋白纤维聚集体的形貌第44-45页
        2.2.6 石英晶体微天平(QCM)测定Aβ(1-40)在手性界面的吸附量第45-48页
        2.2.7 针尖增强拉曼光谱(TERS)测定纤维聚集体的二级结构第48-49页
        2.2.8 定量纳米力学性能测试(PeakForce QNM)测定聚集体的杨氏模量第49-51页
        2.2.9 荧光滴定测定结合常数第51页
        2.2.10 接触角(CA)测定手性界面的疏水性第51-52页
        2.2.11 分子模拟和结构优化第52-53页
    2.3 结果与讨论第53-83页
        2.3.1 界面对Aβ(1-40)聚集的影响第53-54页
        2.3.2 淀粉样蛋白纤维聚集体在不同手性界面上的形貌分析第54-56页
        2.3.3 Aβ(1-40)在不同手性界面上的吸附量分析第56-59页
        2.3.4 Aβ(1-40)一级结构分析第59-61页
        2.3.5 Aβ(1-40) 在手性界面上的聚集体的二级结构分析第61-65页
        2.3.6 不同纤维聚集体的微观力学性质分析第65-67页
        2.3.7 Aβ(1-40) 分子上结合位点分析第67-73页
        2.3.8 手性诱导Aβ(1-40)分子在界面上选择性自组装的分子机制分析第73-83页
    2.4 本章小结第83-85页
第3章 界面曲率对Aβ(1-40)分子在纳米生物界面上纤维化动力学的影响第85-113页
    3.1 引言第85-87页
    3.2 实验部分第87-93页
        3.2.1 原料与主要试剂第87-88页
        3.2.2 测试表征与仪器第88页
        3.2.3 粒径为36±3nm的金纳米粒子的制备第88-89页
        3.2.4 粒径为25±3nm的金纳米粒子的制备第89-90页
        3.2.5 粒径为16±2nm的金纳米粒子的制备第90页
        3.2.6 Aβ(1-40)单体的前处理第90-91页
        3.2.7 ThT荧光标记法表征Aβ(1-40)纤维化聚集动力学第91-92页
        3.2.8 透射电子显微镜(TEM)表征金纳米离子及蛋白纤维的形貌第92页
        3.2.9 原子力显微镜(AFM)表征蛋白纤维的形貌第92页
        3.2.10 石英微天平(QCM)测定Aβ(1-40)在界面上的吸附量第92-93页
        3.2.11 紫外-可见分光光度计(UV-vis)测金纳米粒子的紫外吸收峰第93页
    3.3 结果与讨论第93-111页
        3.3.1 粒径为36±3nm的金纳米粒子的表征第93-94页
        3.3.2 粒径为25±3nm的金纳米粒子的表征第94页
        3.3.3 粒径为16±2nm的金纳米粒子的表征第94-95页
        3.3.4 不同浓度的 36 nmAuNPs对Aβ(1-40)纤维化动力学影响分析第95-99页
        3.3.5 不同浓度的 25 nmAuNPs对Aβ(1-40)纤维化动力学影响分析第99-103页
        3.3.6 不同浓度的 16 nmAuNPs对Aβ(1-40)纤维化动力学影响分析第103-106页
        3.3.7 相同总表面积三种AuNPs对Aβ(1-40)纤维化动力学影响分析第106-108页
        3.3.8 表面曲率不同的AuNPs对溶液环境的影响分析第108-110页
        3.3.9 界面曲率影响Aβ(1-40)纤维化的分子机制分析第110-111页
    3.4 本章小结第111-113页
第4章 分子手性在纳米生物界面上对Aβ(1-40)分子纤维化动力学的影响第113-141页
    4.1 引言第113-115页
    4.2 实验部分第115-123页
        4.2.1 原料与主要试剂第115-117页
        4.2.2 测试表征与仪器第117页
        4.2.3 L(D)-NIBC修饰的手性金纳米粒子的制备第117-118页
        4.2.4 Aβ(1-40)单体的前处理第118-119页
        4.2.5 ThT荧光标记法表征Aβ(1-40)纤维化聚集动力学第119页
        4.2.6 透射电子显微镜(TEM)表征金纳米粒子的形貌第119页
        4.2.7 原子力显微镜(AFM)表征蛋白纤维的形貌第119-120页
        4.2.8 圆二色谱(CD)表征金纳米粒子及蛋白的旋光性第120页
        4.2.9 紫外-可见分光光度计(UV-vis)测金纳米粒子的紫外吸收峰第120页
        4.2.10 手性金纳米粒子的傅里叶变换红外光谱(FT-IR)测定第120页
        4.2.11 荧光滴定测定结合常数第120-121页
        4.2.12 分子模拟和结构优化第121-122页
        4.2.13 噻唑蓝(MTT)比色法测定金纳米粒子的细胞毒性第122-123页
    4.3 结果与讨论第123-139页
        4.3.1 L-型金纳米粒子的表征第123-124页
        4.3.2 D-型金纳米粒子的表征第124-126页
        4.3.3 手性金纳米粒子的光学活性分析第126-128页
        4.3.4 L-型金纳米粒子对Aβ(1-40)纤维化聚集动力学的影响分析第128-129页
        4.3.5 D-型金纳米粒子对Aβ(1-40)纤维化聚集动力学的影响分析第129-130页
        4.3.6 手性金纳米粒子对Aβ(1-40)纤维化聚集动力学的对比分析第130-132页
        4.3.7 手性金纳米粒子对Aβ(1-40) 纤维二级结构的影响分析第132-133页
        4.3.8 手性金纳米粒子的细胞毒性分析第133-134页
        4.3.9 Aβ(1-40)分子与纳米粒子作用位点分析第134-139页
        4.3.10 分子手性在纳米生物界面上影响Aβ(1-40)聚集和纤维化的分子机制分析第139页
    4.4 本章小结第139-141页
第5章 结论与展望第141-144页
    5.1 结论第141-143页
    5.2 展望第143-144页
附加表征图第144-159页
参考文献第159-177页
攻读博士学位期间主要的研究成果第177-178页
攻读博士学位期间所荣获的奖励第178-179页
致谢第179-180页

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