| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 心血管系统疾病与治疗 | 第13-14页 |
| 1.1.1 心血管系统疾病现状 | 第13页 |
| 1.1.2 冠心病现状 | 第13-14页 |
| 1.1.3 冠心病的治疗 | 第14页 |
| 1.2 血管支架介入治疗 | 第14-15页 |
| 1.2.1 血管支架的应用现状 | 第14-15页 |
| 1.2.2 血管支架的发展方向 | 第15页 |
| 1.3 心血管材料表面改性的研究现状 | 第15-17页 |
| 1.3.1 材料表面抗凝改性 | 第15-16页 |
| 1.3.2 材料表面促/诱导内皮化改性 | 第16-17页 |
| 1.4 材料表面微环境构建的研究现状 | 第17-19页 |
| 1.4.1 微环境构建的意义 | 第17页 |
| 1.4.2 抗凝/诱导内皮化微环境构建 | 第17-18页 |
| 1.4.3 多功能微环境的构建 | 第18-19页 |
| 1.5 本文研究目的、意义、研究内容及技术路线 | 第19-22页 |
| 1.5.1 研究目的及意义 | 第19-20页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第20页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第20-22页 |
| 第2章 实验方法及原理 | 第22-30页 |
| 2.1 微环境构建方法及原理 | 第22-23页 |
| 2.1.1 微环境构建原理 | 第22页 |
| 2.1.2 微环境构建方法与流程 | 第22-23页 |
| 2.2 微环境表征方法及原理 | 第23-26页 |
| 2.2.1 原子力显微镜(AFM) | 第23页 |
| 2.2.2 水接触角(WCA) | 第23-24页 |
| 2.2.3 傅立叶变换红外检测(FTIR) | 第24页 |
| 2.2.4 X射线光电子能谱检测(XPS) | 第24-25页 |
| 2.2.5 MicroBCA蛋白质定量检测 | 第25页 |
| 2.2.6 阿辛蓝(Alcian Blue)染色检测 | 第25页 |
| 2.2.7 免疫荧光染色 | 第25-26页 |
| 2.2.8 甲苯氨蓝肝素释放检测 | 第26页 |
| 2.3 微环境体外抗凝功能评价方法 | 第26-28页 |
| 2.3.1 凝血时间检测 | 第26-27页 |
| 2.3.2 血小板粘附及激活检测 | 第27页 |
| 2.3.3 ATIII抗体结合检测 | 第27页 |
| 2.3.4 纤维蛋白原吸附与激活检测 | 第27页 |
| 2.3.5 动态全血抗凝血检测 | 第27-28页 |
| 2.4 微环境体外促/诱导内皮化评价方法 | 第28-30页 |
| 2.4.1 细胞体外静态培养 | 第28页 |
| 2.4.2 细胞体外动态培养 | 第28页 |
| 2.4.3 细胞迁移实验 | 第28-29页 |
| 2.4.4 EPCs体外趋化实验 | 第29-30页 |
| 第3章 抗凝/诱导内皮微环境的构建与表征 | 第30-41页 |
| 3.1 试剂与仪器 | 第30-31页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第30页 |
| 3.1.2 试剂配制 | 第30-31页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第31页 |
| 3.2 表面微环境的构建 | 第31-32页 |
| 3.2.1 实验Ti片的制备 | 第31页 |
| 3.2.2 Ti表面碱活化 | 第31页 |
| 3.2.3 碱活化Ti表面生物分子的固定 | 第31-32页 |
| 3.3 表面微环境定性定量表征结果 | 第32-39页 |
| 3.3.1 AFM表面形貌检测结果 | 第32-33页 |
| 3.3.2 水接触角(WCA)检测结果 | 第33-34页 |
| 3.3.3 FTIR化学成分分析结果 | 第34-35页 |
| 3.3.4 XPS检测结果 | 第35-36页 |
| 3.3.5 MicroBCA检测Aividin | 第36-37页 |
| 3.3.6 样品表面阿辛蓝染色结果 | 第37-38页 |
| 3.3.7 样品表面B-GREDVY荧光染色结果 | 第38-39页 |
| 3.4 体系稳定性(B-Hep释放)检测 | 第39-40页 |
| 3.5 本章小结 | 第40-41页 |
| 第4章 抗凝/诱导内皮微环境血液相容性评价 | 第41-52页 |
| 4.1 试剂与仪器 | 第41-42页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第41页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第41页 |
| 4.1.3 实验材料准备 | 第41-42页 |
| 4.2 ATIII结合能力检测 | 第42-43页 |
| 4.3 凝血时间(APTT)检测结果 | 第43-45页 |
| 4.4 表面微环境对血小板的影响 | 第45-47页 |
| 4.4.1 血小板免疫荧光染色及计数结果 | 第45-46页 |
| 4.4.2 血小板SEM检测结果 | 第46-47页 |
| 4.5 表面微环境对血浆蛋白的影响 | 第47-49页 |
| 4.5.1 纤维蛋白原吸附及激活变性检测 | 第47-48页 |
| 4.5.2 纤维蛋白原变性率 | 第48-49页 |
| 4.6 动态全血实验 | 第49-50页 |
| 4.7 本章小结 | 第50-52页 |
| 第5章 抗凝/诱导内皮微环境细胞相容性评价 | 第52-66页 |
| 5.1 实验试剂与仪器 | 第52-53页 |
| 5.1.1 实验试剂准备 | 第52页 |
| 5.1.2 试剂准备与配制 | 第52-53页 |
| 5.1.3 实验器材准备 | 第53页 |
| 5.2 ECs相容性实验 | 第53-59页 |
| 5.2.1 ECs的提取和培养 | 第53-54页 |
| 5.2.2 ECs体外静态培养结果 | 第54-55页 |
| 5.2.3 ECs体外动态培养结果 | 第55-58页 |
| 5.2.4 ECs体外迁移实验 | 第58-59页 |
| 5.3 SMCs相容性评价 | 第59-62页 |
| 5.3.1 SMCs的提取和培养 | 第59页 |
| 5.3.2 SMCs体外静态培养结果 | 第59-61页 |
| 5.3.3 SMCs体外动态培养结果 | 第61-62页 |
| 5.4 EPCs相容性评价 | 第62-65页 |
| 5.4.1 EPCs的提取和培养 | 第63页 |
| 5.4.2 EPCs动态培养 | 第63-65页 |
| 5.5 本章小结 | 第65-66页 |
| 第6章 多功能微环境体外诱导内皮化的探究 | 第66-81页 |
| 6.1 基础体系工艺选择 | 第66-67页 |
| 6.2 内皮细胞生长因子(VEGF)的引入 | 第67页 |
| 6.3 VEGF稳定性(释放)检测 | 第67-68页 |
| 6.3.1 VEGF释放检测方法 | 第67-68页 |
| 6.3.2 VEGF释放检测结果 | 第68页 |
| 6.4 抗凝/诱导内皮化多功能微环境表面性质检测 | 第68-69页 |
| 6.4.1 AFM检测结果 | 第68-69页 |
| 6.4.2 水接触角检测结果 | 第69页 |
| 6.5 抗凝/诱导内皮化多功能微环境血液相容性评价 | 第69-74页 |
| 6.5.1 ATIII结合能力检测 | 第69-70页 |
| 6.5.2 凝血时间检测 | 第70-71页 |
| 6.5.3 血小板粘附行为检测 | 第71-72页 |
| 6.5.4 纤维蛋白原吸附及激活行为检测 | 第72-73页 |
| 6.5.5 动态全血实验 | 第73-74页 |
| 6.6 抗凝/诱导内皮化多功能微环境细胞相容性评价 | 第74-77页 |
| 6.6.1 ECs相容性评价 | 第74-75页 |
| 6.6.2 SMCs相容性评价 | 第75-76页 |
| 6.6.3 EPCs相容性评价 | 第76-77页 |
| 6.7 表面微环境诱导内皮化功能初步评价 | 第77-80页 |
| 6.7.1 EPCs体外趋化实验 | 第78-79页 |
| 6.7.2 微环境诱导ECs迁移实验 | 第79-80页 |
| 6.8 本章小结 | 第80-81页 |
| 第7章 抗凝/诱导内皮化多功能微环境机理探讨 | 第81-89页 |
| 7.1 微环境基底对生物相容性的影响 | 第81-83页 |
| 7.1.1 超亲水性基底血液相容性/细胞相容性的平衡 | 第81-82页 |
| 7.1.2 微环境基底电荷性质对生物相容性的影响 | 第82-83页 |
| 7.2 微环境中生物分子对生物相容性的影响 | 第83-87页 |
| 7.2.1 B-Hep在微环境中的作用 | 第83-85页 |
| 7.2.2 B-GREDVY在微环境中的作用 | 第85-86页 |
| 7.2.3 VEGF在微环境中的作用 | 第86-87页 |
| 7.3 基底与生物因子的共同作用 | 第87-88页 |
| 7.4 本章小结 | 第88-89页 |
| 结论 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-104页 |
| 攻读硕士期间发表的论文及参与的科研项目 | 第104页 |
