摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5页 |
第一章 文献综述 | 第9-27页 |
1.1 细菌的群体感应(quorum-sensing,QS) | 第9-16页 |
1.1.1 细菌群体感应概述 | 第9-10页 |
1.1.2 革兰氏阴性细菌种内群体感应系统--AHLs系统 | 第10-12页 |
1.1.3 革兰氏阳性细菌种内群体感应系统--AIP系统 | 第12-14页 |
1.1.4 细菌种间的群体感应系统--AI-2系统 | 第14-15页 |
1.1.5 群体感应系统的功能 | 第15-16页 |
1.2 群体感应AHLs系统的干扰 | 第16-21页 |
1.2.1 AHLs系统信号干扰 | 第16-18页 |
1.2.2 AHLs系统信号干扰的应用 | 第18-20页 |
1.2.3 AHLs系统检测 | 第20-21页 |
1.3 铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa,PA) | 第21-26页 |
1.3.1 PA的致病机理及耐药机制 | 第21-23页 |
1.3.2 PA的QS系统 | 第23-25页 |
1.3.3 对PA的QS系统进行干扰的意义 | 第25-26页 |
1.4 本实验的目的与创新 | 第26-27页 |
第二章 材料与方法 | 第27-39页 |
2.1 实验材料 | 第27-29页 |
2.1.1 菌种 | 第27页 |
2.1.2 培养基 | 第27-29页 |
2.2 样品制备 | 第29页 |
2.2.1 信号分子(AHLs型)的制备 | 第29页 |
2.2.2 信号分子抑制剂的制备 | 第29页 |
2.3 检测方法 | 第29-30页 |
2.3.1 检测菌CF11的纯化 | 第29页 |
2.3.2 信号分子活性的检测 | 第29-30页 |
2.3.3 信号分子抑制剂活性的检测 | 第30页 |
2.4 对信号分子抑制剂进行进一步提纯的方法尝试 | 第30-32页 |
2.4.1 用醇溶解 | 第30-31页 |
2.4.2 利用大孔吸附树脂进行分离 | 第31页 |
2.4.3 利用高效液相色谱进行检测 | 第31页 |
2.4.4 利用离子交换树脂进行分离 | 第31-32页 |
2.5 不同发酵条件对信号分子抑制剂生产的影响 | 第32-33页 |
2.5.1 信号分子抑制剂生产曲线的测定 | 第32页 |
2.5.2 碳源对信号分子抑制剂生产的影响 | 第32-33页 |
2.5.3 氮源对信号分子抑制剂生产的影响 | 第33页 |
2.5.4 装液量对信号分子抑制剂生产的影响 | 第33页 |
2.6 测定PAO1的胞外酶活性 | 第33-39页 |
2.6.1 还原糖标准曲线的绘制 | 第33-34页 |
2.6.2 酪氨酸标准曲线的绘制 | 第34-36页 |
2.6.3 粗酶的制备 | 第36页 |
2.6.4 蛋白酶活力测定 | 第36页 |
2.6.5 纤维素酶活力测定 | 第36-37页 |
2.6.6 果胶酶活力测定 | 第37页 |
2.6.7 几丁质酶活力测定 | 第37-39页 |
第三章 结果与讨论 | 第39-50页 |
3.1 对信号分子抑制剂的进一步提纯 | 第39-43页 |
3.1.1 用醇溶解 | 第39-40页 |
3.1.2 利用大孔吸附树脂进行分离 | 第40-41页 |
3.1.3 利用高效液相色谱进行检测 | 第41页 |
3.1.4 利用离子交换树脂进行分离 | 第41-43页 |
3.1.5 对信号分子抑制剂进一步分离纯化的总结 | 第43页 |
3.2 不同发酵条件对信号分子抑制剂生产的影响 | 第43-47页 |
3.2.1 信号分子抑制剂生产曲线的测定 | 第43-44页 |
3.2.2 碳源对信号分子抑制剂生产的影响 | 第44-45页 |
3.2.3 氮源对信号分子抑制剂生产的影响 | 第45-46页 |
3.2.4 装液量对信号分子抑制剂生产的影响 | 第46-47页 |
3.3 测定PAO1的胞外酶活性 | 第47-50页 |
3.3.1 还原糖标准曲线 | 第47页 |
3.3.2 酪氨酸标准曲线 | 第47-48页 |
3.3.3 蛋白酶活力 | 第48页 |
3.3.4 纤维素酶活力 | 第48-49页 |
3.3.5 果胶酶活力 | 第49页 |
3.3.6 几丁质酶活力 | 第49-50页 |
第四章 结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-56页 |
致谢 | 第56页 |