摘要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-12页 |
英文缩略语 | 第13-18页 |
第一部分:氟西汀抑制MCT诱导肺动脉高压大鼠S100A4和RAGE蛋白表达 | 第18-39页 |
1 前言 | 第18-20页 |
2 材料和方法 | 第20-29页 |
2.1 实验动物 | 第20页 |
2.2 试剂 | 第20-21页 |
2.3 实验仪器 | 第21-22页 |
2.4 试剂配置 | 第22-25页 |
2.5 实验方法 | 第25-29页 |
2.5.1 建立MCT诱导的肺动脉高压大鼠模型 | 第25页 |
2.5.2 大鼠肺动脉压、右心室肥厚指数的检测结果检测 | 第25页 |
2.5.3 肺组织切片的制备 | 第25-26页 |
2.5.4 肺血管重构检测 | 第26页 |
2.5.5 Western Blotting方法检测肺组织、肺动脉及右心组织中S100A4与RAGE蛋白的表达 | 第26-28页 |
2.5.6 化学技术检测S100A4蛋白表达水平 | 第28-29页 |
2.5.7 统计学处理 | 第29页 |
3 结果 | 第29-37页 |
3.1 氟西汀对MCT诱导肺动脉高压大鼠血流动力学、右心指数及左心重量的影响 | 第29-30页 |
3.2 氟西汀对MCT诱导PAH大鼠肺动脉形态学的影响 | 第30-31页 |
3.3 氟西汀对MCT诱导大鼠右心形态学的影响 | 第31-32页 |
3.4 氟西汀对MCT诱导肺动脉高压大鼠肺组织中S100A4与RAGE蛋白表达的影响 | 第32-34页 |
3.5 氟西汀对MCT诱导肺动脉高压大鼠右心中S100A4与RAGE蛋白表达的影响 | 第34-36页 |
3.6 氟西汀对MCT诱导大鼠肺动脉中S100A4与RAGE蛋白表达的影响 | 第36-37页 |
4 讨论 | 第37-39页 |
第二部分:氟西汀抑制MCT诱导肺动脉高压大鼠肺组织中S100A4对MDM2、p53及p-p53的影响 | 第39-52页 |
1 前言 | 第39-41页 |
2 材料和方法 | 第41-47页 |
2.1 实验动物 | 第41页 |
2.2 药品与试剂 | 第41-42页 |
2.3 实验仪器 | 第42-43页 |
2.4 液体配制 | 第43-45页 |
2.5 实验方法 | 第45-47页 |
2.5.1 动物分组及肺动脉高压模型建立 | 第45页 |
2.5.2 Real-Time PCR检测肺组织中MDM2 mRNA的含量 | 第45-46页 |
2.5.3 免疫组织化学技术检测肺组织中MDM2蛋白 | 第46页 |
2.5.4 Western Blotting方法检测肺组织中p53及p-p53蛋白的表达水平 | 第46页 |
2.5.5 统计学处理 | 第46-47页 |
3 结果 | 第47-50页 |
3.1 氟西汀抗MCT诱导的肺动脉高压大鼠肺组织中MDM2含量的减少 | 第47-48页 |
3.2 氟西汀抗MCT诱导的肺动脉高压大鼠肺组织中p53含量的增多、p-p53蛋白含量的减少 | 第48-50页 |
4 讨论 | 第50-52页 |
第三部分:氟西汀抑制肺动脉高压大鼠右心、肺组织中S100A4对MMPS的上调 | 第52-64页 |
1 前言 | 第52-53页 |
2 材料与方法 | 第53-57页 |
2.1 实验动物 | 第53页 |
2.2 药品与试剂 | 第53-54页 |
2.3 实验仪器 | 第54-55页 |
2.4 液体配制 | 第55-57页 |
2.5 实验方法 | 第57页 |
2.5.1 动物分组及肺动脉高压模型建立 | 第57页 |
2.5.2 Western Blotting方法检测肺组织、右心中MMP13及右心MMP2与MMP9蛋白的表达水平 | 第57页 |
2.5.3 统计学处理 | 第57页 |
3 结果 | 第57-60页 |
3.1 氟西汀抑制MCT诱导的肺动脉高压大鼠肺组织中MMP13表达的增多 | 第57-58页 |
3.2 氟西汀抑制MCT诱导的肺动脉高压大鼠右心组织中MMP2、MMP9与MMP13表达的增多 | 第58-60页 |
4 讨论 | 第60-64页 |
本研究创新性的自我评价 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-73页 |
综述 | 第73-86页 |
参考文献 | 第79-86页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第86-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
个人简历 | 第88页 |