| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 羊栖菜及羊栖菜多糖概况 | 第11-12页 |
| 1.2 抗氧化与抗衰老 | 第12-16页 |
| 1.3 JNK信号通路与衰老 | 第16-18页 |
| 1.3.1 JNK与胰岛素/胰岛素样IGF-1信号通路 | 第16-17页 |
| 1.3.2 JNK与TOR信号通路 | 第17页 |
| 1.3.3 JNK与活性氧ROS | 第17-18页 |
| 1.4 NRF2/ARE信号通路 | 第18-19页 |
| 1.5 生物模型 | 第19页 |
| 1.6 研究意义 | 第19-20页 |
| 1.7 本论文的研究内容 | 第20-21页 |
| 1.8 本论文的创新之处 | 第21-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-38页 |
| 2.1 材料 | 第22-27页 |
| 2.1.1 实验动物及材料 | 第22-23页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第24-26页 |
| 2.1.4 实验试剂配置 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-37页 |
| 2.2.1 RNA的提取 | 第27-28页 |
| 2.2.2 cDNA的获得 | 第28页 |
| 2.2.3 实时荧光定量PCR | 第28-29页 |
| 2.2.4 RT-PCR | 第29-31页 |
| 2.2.5 蛋白样品制备 | 第31页 |
| 2.2.6 蛋白标准曲线的制作及蛋白浓度测定 | 第31-32页 |
| 2.2.7 蛋白质免疫印迹(WesternBlot) | 第32-33页 |
| 2.2.8 免疫共沉淀(Co-IP) | 第33-34页 |
| 2.2.9 质粒提取与载体构建 | 第34-35页 |
| 2.2.10 细胞接种 | 第35-36页 |
| 2.2.11 配置转染试剂 | 第36页 |
| 2.2.12 双荧光素酶的检测 | 第36-37页 |
| 2.3 统计学方法与生物信息学方法 | 第37-38页 |
| 第三章 实验结果 | 第38-49页 |
| 3.1 JNK1/2在老年小鼠中表达水平显著下调 | 第38-39页 |
| 3.2 Jnk1-β2,Jnk2-α1/β2与衰老密切相关 | 第39-43页 |
| 3.3 羊栖菜多糖SFPS促进54kDaJNK的表达 | 第43-44页 |
| 3.4 羊栖菜多糖SFPS促进Jnk1-β2的表达 | 第44-45页 |
| 3.5 54kDaJNK影响NRF2/ARE信号通路的激活 | 第45-46页 |
| 3.6 JNK蛋白C-terminaltail激活NRF2 | 第46-48页 |
| 3.7 总结 | 第48-49页 |
| 第四章 讨论 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 附录A | 第57-58页 |
| 中英文对照及英文缩写词表 | 第57-58页 |
| 在校期间成果及发表论文情况 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
