| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 目录 | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 生物医学材料概述 | 第11-12页 |
| 1.1.1 生物材料发展历程 | 第11页 |
| 1.1.2 生物医用材料分类 | 第11-12页 |
| 1.1.3 生物医用材料要求 | 第12页 |
| 1.2 金属植入体材料的表面改性 | 第12-14页 |
| 1.2.1 表面生物惰性化改性 | 第13页 |
| 1.2.2 表面生物活性化改性 | 第13页 |
| 1.2.3 表面生物抗菌改性 | 第13-14页 |
| 1.3 生物涂层构建方法 | 第14-15页 |
| 1.3.1 电化学沉积法 | 第14页 |
| 1.3.2 溶胶-凝胶法 | 第14-15页 |
| 1.3.3 基于自组装单分子层的化学修饰 | 第15页 |
| 1.4 多孔阳极氧化铝简介 | 第15-17页 |
| 1.5 钙-硅基生物活性玻璃研究进展 | 第17-18页 |
| 1.6 抗菌剂铜在生物材料中的应用 | 第18页 |
| 1.7 立题依据 | 第18-19页 |
| 1.8 研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 CaO-SiO_2-CuO/PAA 的制备及其细胞相容性和抗菌性能研究 | 第20-49页 |
| 2.1 引言 | 第20-21页 |
| 2.2 实验材料、试剂及仪器 | 第21-23页 |
| 2.2.1 实验材料及试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.3 改进两步阳极氧化法制备大孔径 PAA[46] | 第23-24页 |
| 2.4 CaO-SiO_2-CuO/PAA 的制备 | 第24-26页 |
| 2.5 模拟体液(SBF)浸泡及离子缓释实验 | 第26-27页 |
| 2.6 体外细胞相容性能测试 | 第27-29页 |
| 2.6.1 材料准备 | 第27页 |
| 2.6.2 乳鼠成骨细胞的分离培养与纯化 | 第27-28页 |
| 2.6.3 乳鼠成骨细胞体外粘附实验 | 第28页 |
| 2.6.4 乳鼠成骨细胞体外增殖实验 | 第28-29页 |
| 2.7 体外抗菌性能测试 | 第29-31页 |
| 2.7.1 抗菌实验前期准备 | 第29-30页 |
| 2.7.2 抗菌实验 | 第30-31页 |
| 2.8 实验结果与分析 | 第31-48页 |
| 2.8.1 PAA、CaO-SiO_2/PAA 及 CaO-SiO_2-CuO/PAA 的表征 | 第31-37页 |
| 2.8.2 CaO-SiO_2/PAA 及 CaO-SiO_2-CuO/PAA 的 SBF 浸泡实验 | 第37-41页 |
| 2.8.3 CaO-SiO_2/PAA 及 CaO-SiO_2-CuO/PAA 在 SBF 中的离子缓释研究 | 第41-43页 |
| 2.8.4 CaO-SiO_2-CuO/PAA 的体外细胞相容性能测试 | 第43-46页 |
| 2.8.5 CaO-SiO_2-CuO/PAA 的体外抗菌性能测试 | 第46-48页 |
| 2.9 本章小结 | 第48-49页 |
| 第三章 多孔阳极氧化铝疏水表面的构建及抗菌性能研究 | 第49-59页 |
| 3.1 引言 | 第49页 |
| 3.2 实验材料、试剂及仪器 | 第49-51页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第49-50页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第50页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第50-51页 |
| 3.3 50nm 多孔阳极氧化铝的制备 | 第51页 |
| 3.4 多孔阳极氧化铝疏水表面的构建 | 第51页 |
| 3.5 疏水表面的表征 | 第51-52页 |
| 3.6 疏水表面的抗菌性能测试 | 第52-53页 |
| 3.6.1 抗菌实验前期准备 | 第52页 |
| 3.6.2 抗菌实验 | 第52-53页 |
| 3.7 实验结果与分析 | 第53-58页 |
| 3.7.1 PTES/PAA 表面成分分析 | 第53-54页 |
| 3.7.2 PTES/PAA 表面接触角测试 | 第54-56页 |
| 3.7.3 PTES/PAA 表面抗菌性能测试 | 第56-58页 |
| 3.8 本章小结 | 第58-59页 |
| 第四章 结论与展望 | 第59-61页 |
| 4.1 结论 | 第59-60页 |
| 4.2 展望 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 东华大学硕士研究生在学期间发表学术论文及专利目录 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
