| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 第1章 引言 | 第8-15页 |
| 1.1 自闭症 | 第8-11页 |
| 1.1.1 自闭症简介 | 第8-9页 |
| 1.1.2 自闭症的发病机理 | 第9页 |
| 1.1.3 自闭症与相关信号通路 | 第9-10页 |
| 1.1.4 自闭症的治疗手段 | 第10-11页 |
| 1.2 自闭症高风险基因CTNND2及其研究现状 | 第11-13页 |
| 1.2.1 CTNND2简述 | 第11-12页 |
| 1.2.2 CTNND2在生物体中的表达 | 第12页 |
| 1.2.3 CTNND2的生物学功能 | 第12-13页 |
| 1.2.4 CTNND2与自闭症 | 第13页 |
| 1.2.5 CTNND2与其他精神类疾病 | 第13页 |
| 1.3 自闭症与早期神经发育 | 第13-15页 |
| 1.3.1 自闭症患者早期临床表现 | 第13-14页 |
| 1.3.2 自闭症患者早期神经发育问题 | 第14-15页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第15-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-18页 |
| 2.1.1 实验模式动物 | 第15-16页 |
| 2.1.2 实验器材 | 第16页 |
| 2.1.3 实验药品 | 第16-17页 |
| 2.1.4 分子实验试剂 | 第17-18页 |
| 2.2 实验器材、药品与试剂 | 第18-32页 |
| 2.2.1 胚胎Morpholino注射及培养 | 第18-20页 |
| 2.2.2 斑马鱼总RNA的提取 | 第20-21页 |
| 2.2.3 斑马鱼总cDNA的制备 | 第21页 |
| 2.2.4 TA克隆与转化 | 第21-22页 |
| 2.2.5 扩大培养与阳性克隆的选择 | 第22-23页 |
| 2.2.6 RNA探针的制备 | 第23-24页 |
| 2.2.7 原位杂交实验 | 第24-29页 |
| 2.2.8 免疫组织化学实验 | 第29-32页 |
| 第3章 实验结果与分析 | 第32-53页 |
| 3.1 ctnnd2基因在斑马鱼体内的时空表达 | 第32-33页 |
| 3.2 ctnnd2b Morpholino敲减效力验证 | 第33-35页 |
| 3.3 ctnnd2b与斑马鱼体节发育 | 第35-39页 |
| 3.3.1 ctnnd2b敲减导致斑马鱼胚胎体节发育异常 | 第36-37页 |
| 3.3.2 ctnnd2b敲减导致斑马鱼幼鱼体轴弯曲 | 第37-39页 |
| 3.4 ctnnd2b与WNT信号通路 | 第39-42页 |
| 3.4.1 ctnnd2b敲减导致axin2表达下调 | 第39-40页 |
| 3.4.2 ctnnd2b敲减导致wnt3a表达延迟 | 第40-41页 |
| 3.4.3 ctnnd2b敲减对β-catenin表达无明显影响 | 第41-42页 |
| 3.5 ctnnd2b与早期神经细胞增殖异常 | 第42-45页 |
| 3.5.1 ctnnd2b敲减影响Huc标记神经细胞 | 第43-44页 |
| 3.5.2 ctnnd2b敲减影响Zn-5标记神经细胞 | 第44-45页 |
| 3.6 ctnnd2b与小脑早期发育 | 第45-50页 |
| 3.6.1 ctnnd2b敲减对athoh1a标记颗粒细胞前体无明显影响 | 第46-47页 |
| 3.6.2 ctnnd2b敲减对athoh1b标记颗粒细胞前体无明显影响 | 第47-48页 |
| 3.6.3 ctnnd2b敲减对athoh1c标记颗粒细胞前体无明显影响 | 第48-49页 |
| 3.6.4 ctnnd2b敲减影响ptf1a标记浦肯野细胞前体 | 第49-50页 |
| 3.7 ctnnd2b与斑马鱼幼鱼行为学 | 第50-53页 |
| 第4章 结论与讨论 | 第53-55页 |
| 4.1 结论 | 第53-54页 |
| 4.1.1 ctnnd2b影响斑马鱼早期体节发育过程 | 第53页 |
| 4.1.2 ctnnd2b影响斑马鱼小脑浦肯野细胞发育 | 第53-54页 |
| 4.2 进一步工作方向 | 第54-55页 |
| 第5章 总结 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
