| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 1 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 UV-B辐射增强对海洋藻类的危害及植物的生理生化响应 | 第10-12页 |
| 1.1.1 UV-B辐射增强对海洋藻类生长发育的影响 | 第10页 |
| 1.1.2 UV-B辐射增强对海洋藻类光合系统的影响 | 第10-11页 |
| 1.1.3 UV-B辐射增强对海洋藻类蛋白质的影响 | 第11页 |
| 1.1.4 UV-B辐射增强对海洋藻类DNA的影响 | 第11-12页 |
| 1.2 藻类对UV-B辐射的适应机制 | 第12-15页 |
| 1.2.1 趋避迁移 | 第12页 |
| 1.2.2 屏蔽UV-B辐射 | 第12-13页 |
| 1.2.3 合成补偿性物质 | 第13-14页 |
| 1.2.4 活性氧自由基的清除 | 第14页 |
| 1.2.5 DNA修复 | 第14-15页 |
| 1.3 双向电泳技术 | 第15-16页 |
| 1.3.1 双向电泳技术的建立与发展 | 第15页 |
| 1.3.2 双向电泳技术的优缺点 | 第15-16页 |
| 1.4 RNA-seq | 第16-18页 |
| 1.4.1 RNA-seq的建立及发展 | 第16-17页 |
| 1.4.2 RNA-Seq的技术优势 | 第17页 |
| 1.4.3 RNA-Seq的主要应用 | 第17-18页 |
| 1.5 立题依据及意义 | 第18-20页 |
| 2 孔石莼与鼠尾藻叶绿素含量及叶绿素荧光参数变化 | 第20-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 植物材料及处理 | 第20页 |
| 2.1.2 化学试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 光合色素提取 | 第21页 |
| 2.2.2 叶绿素荧光参数测定 | 第21-22页 |
| 2.3 实验结果 | 第22-28页 |
| 2.3.1 孔石莼和鼠尾藻光合色素含量测定 | 第22-24页 |
| 2.3.2 孔石莼和鼠尾藻叶绿素荧光参数测定 | 第24-28页 |
| 2.4 讨论 | 第28-30页 |
| 3 孔石莼与鼠尾藻蛋白提取及双向电泳 | 第30-42页 |
| 3.1 实验材料 | 第30-31页 |
| 3.1.1 植物材料及处理 | 第30页 |
| 3.1.2 化学试剂 | 第30页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第30-31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-35页 |
| 3.2.1 酚抽提-醋酸铵沉淀法提取蛋白质 | 第31-32页 |
| 3.2.2 等电聚焦 | 第32-33页 |
| 3.2.3 SDS-PAGE电泳 | 第33-34页 |
| 3.2.4 各溶液配方 | 第34-35页 |
| 3.3 实验结果 | 第35-40页 |
| 3.3.1 双向电泳图谱 | 第35-37页 |
| 3.3.2 PDQquest软件分析 | 第37-40页 |
| 3.4 讨论 | 第40-42页 |
| 4 孔石莼与鼠尾藻在UV-B处理下转录组差异表达分析 | 第42-70页 |
| 4.1 实验材料 | 第42页 |
| 4.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 4.2.1 .硅藻土-苯酚法提取RNA | 第42-43页 |
| 4.2.2 建库测序 | 第43页 |
| 4.2.3 分析流程 | 第43-44页 |
| 4.3 实验结果 | 第44-68页 |
| 4.3.1 原始测序数据统计 | 第44页 |
| 4.3.2 测序评估 | 第44-46页 |
| 4.3.3 Unigene组装 | 第46-51页 |
| 4.3.4 预测编码蛋白框(CDS) | 第51-55页 |
| 4.3.5 相关性分析 | 第55-56页 |
| 4.3.6 差异表达分析 | 第56-68页 |
| 4.4 讨论 | 第68-70页 |
| 本研究主要结论 | 第70-71页 |
| 本研究后续研究设想 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 附录一 攻读硕士学位期间发表的学术论文目录 | 第82-83页 |
