| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-25页 |
| 1.1 天然染料综述 | 第13-15页 |
| 1.1.1 天然染料的发展历程 | 第13页 |
| 1.1.2 萘醌类天然染料 | 第13-14页 |
| 1.1.3 2-羟基-1,4萘醌性质概述 | 第14页 |
| 1.1.4 2-羟基-1,4萘醌的应用 | 第14-15页 |
| 1.1.5 2-羟基-1,4萘醌的生物毒性 | 第15页 |
| 1.2 含2-羟基-1,4萘醌废水的常见处理方法 | 第15-16页 |
| 1.3 生物强化技术 | 第16-17页 |
| 1.4 影响有机化合物微生物降解性能的因素 | 第17-18页 |
| 1.4.1 微生物活性对有机化合物降解性能的影响 | 第17页 |
| 1.4.2 化合物结构对有机化合物降解性能的影响 | 第17-18页 |
| 1.4.3 环境因素对微生物降解有机化合物的影响 | 第18页 |
| 1.5 微生物固定化技术 | 第18-21页 |
| 1.5.1 固定化方法分类 | 第19页 |
| 1.5.2 微生物固定化材料 | 第19-20页 |
| 1.5.3 固定化微生物技术的应用 | 第20页 |
| 1.5.4 联合固定化微生物技术介绍 | 第20-21页 |
| 1.5.5 生物碳作为固定化微生物载体的技术优势 | 第21页 |
| 1.6 研究目的与意义、主要内容和技术路线 | 第21-25页 |
| 1.6.1 研究目的与意义 | 第21-22页 |
| 1.6.2 本课题主要研究内容 | 第22-23页 |
| 1.6.3 技术路线 | 第23-25页 |
| 第二章 2羟基-1,4萘醌降解菌的分离、鉴定与生长特性的研究 | 第25-39页 |
| 2.1 材料与方法 | 第25-28页 |
| 2.1.1 培养基、试剂及主要仪器 | 第25页 |
| 2.1.2 2-羟基-1,4萘醌浓度的测定 | 第25-26页 |
| 2.1.3 降解菌株的富集驯化与分离纯化 | 第26页 |
| 2.1.4 降解菌株的培养特征及生理生化鉴定 | 第26页 |
| 2.1.5 降解菌株对不同抗生素耐受性实验 | 第26页 |
| 2.1.6 降解菌株16S rRNA基因序列测定与分析 | 第26-27页 |
| 2.1.7 降解菌系统发育定位 | 第27页 |
| 2.1.8 种子液制备及菌体生长量的测定方法 | 第27页 |
| 2.1.9 菌株生长曲线的测定 | 第27页 |
| 2.1.10 菌株生长特性研究 | 第27-28页 |
| 2.1.11 数据整理与统计分析 | 第28页 |
| 2.2 结果与分析 | 第28-36页 |
| 2.2.1 降解菌株的分离筛选 | 第28-29页 |
| 2.2.2 菌株LH-3的菌落形态、生理生化特征 | 第29-31页 |
| 2.2.3 菌株LH-3的相关DNA序列及系统发育定位 | 第31-33页 |
| 2.2.4 菌株LH-3在LB培养基中的生长曲线 | 第33-34页 |
| 2.2.5 不同环境因素对菌株LH-3生长的影响 | 第34-35页 |
| 2.2.6 不同碳源和氮源对菌株LH-3生长的影响 | 第35-36页 |
| 2.3 讨论 | 第36-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-39页 |
| 第三章 2羟基-1,4萘醌高效降解菌LH-3的降解条件优化 | 第39-49页 |
| 3.1 料与方法 | 第39-41页 |
| 3.1.1 培养基、试剂及主要仪器 | 第39页 |
| 3.1.2 2-羟基-1,4萘醌浓度的测定 | 第39页 |
| 3.1.3 种子液制备以及菌体生长量的测定方法 | 第39页 |
| 3.1.4 菌株LH-3利用2-羟基-1,4萘醌的生长降解曲线 | 第39-40页 |
| 3.1.5 初始pH值对菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌的影响 | 第40页 |
| 3.1.6 温度对菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌的影响 | 第40页 |
| 3.1.7 NaCl浓度对菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌的影响 | 第40页 |
| 3.1.8 2-羟基-1,4萘醌起始浓度对菌株LH-3降解的影响 | 第40-41页 |
| 3.1.9 数据整理与统计分析 | 第41页 |
| 3.2 结果与分析 | 第41-47页 |
| 3.2.1 菌株LH-3利用2-羟基-1,4萘醌的生长降解曲线 | 第41-43页 |
| 3.2.2 初始pH值对菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌的影响 | 第43-44页 |
| 3.2.3 温度对菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.4 不同NaCl浓度对菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌的影响 | 第45-46页 |
| 3.2.5 2-羟基-1,4萘醌起始浓度对菌株LH-3降解的影响 | 第46-47页 |
| 3.3 讨论 | 第47-48页 |
| 3.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 第四章 2羟基-1,4萘醌高效降解菌LH-3的降解途径及降解动力学研究 | 第49-57页 |
| 4.1 材料与方法 | 第49-52页 |
| 4.1.1 培养基、试剂及主要仪器 | 第49页 |
| 4.1.2 2-羟基-1,4萘醌浓度的测定 | 第49页 |
| 4.1.3 种子液制备方法 | 第49-50页 |
| 4.1.4 菌株LH-3降解动力学研究 | 第50-51页 |
| 4.1.5 菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌的代谢途径研究 | 第51页 |
| 4.1.6 数据整理与统计分析 | 第51-52页 |
| 4.2 结果与分析 | 第52-55页 |
| 4.2.1 菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌降解动力学分析 | 第52-53页 |
| 4.2.2 菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌代谢产物分析 | 第53-54页 |
| 4.2.3 菌株LH-3降解2-羟基-1,4萘醌的代谢途径 | 第54-55页 |
| 4.3 讨论 | 第55页 |
| 4.4 本章小结 | 第55-57页 |
| 第五章 海藻酸钠-生物碳联合固定化菌株降解2-羟基-1,4萘醌 | 第57-67页 |
| 5.1 材料与方法 | 第57-59页 |
| 5.1.1 菌种来源与种子液制备 | 第57页 |
| 5.1.2 培养基、试剂及主要仪器 | 第57-58页 |
| 5.1.3 2-羟基-1,4萘醌浓度的测定 | 第58页 |
| 5.1.4 生物碳的制备及结构性能表征 | 第58页 |
| 5.1.5 固定化小球的制备 | 第58页 |
| 5.1.6 固定化小球结构性能测试 | 第58页 |
| 5.1.7 联合固定化菌降解性能测试 | 第58-59页 |
| 5.1.8 不同环境条件下联合固定化菌及游离菌对2-羟基-1,4萘醌降解性能比较 | 第59页 |
| 5.1.9 联合固定化菌重复批量降解试验 | 第59页 |
| 5.1.10 数据整理与统计分析 | 第59页 |
| 5.2 结果与分析 | 第59-64页 |
| 5.2.1 生物碳表征 | 第59-60页 |
| 5.2.2 固定化小球结构性能测试 | 第60-61页 |
| 5.2.3 联合固定化菌降解性能测试 | 第61-62页 |
| 5.2.4 不同环境因素对联合固定化菌和游离菌降解的影响 | 第62-63页 |
| 5.2.5 联合固定化菌重复批量降解实验 | 第63-64页 |
| 5.3 讨论 | 第64-65页 |
| 5.4 本章小结 | 第65-67页 |
| 第六章 SBR反应器处理2-羟基-1,4萘醌废水及微生物种群结构研究 | 第67-73页 |
| 6.1 材料与方法 | 第67-69页 |
| 6.1.1 菌种来源及种子液的制备 | 第67页 |
| 6.1.2 联合固定化菌制备 | 第67页 |
| 6.1.3 SBR反应器实验配水 | 第67页 |
| 6.1.4 SBR反应器试验装置 | 第67-68页 |
| 6.1.5 实验方法 | 第68页 |
| 6.1.6 菌群分析 | 第68-69页 |
| 6.1.7 分析项目与测定方法 | 第69页 |
| 6.1.8 数据整理与统计分析 | 第69页 |
| 6.2 结果与分析 | 第69-71页 |
| 6.2.1 SBR反应器中连续降解实验 | 第69-70页 |
| 6.2.2 反应体系微生物群落结构分析 | 第70-71页 |
| 6.3 讨论 | 第71-72页 |
| 6.4 本章小结 | 第72-73页 |
| 第七章 全文总结与展望 | 第73-75页 |
| 1 全文结论 | 第73-74页 |
| 2 创新点与不足 | 第74页 |
| 2.1 创新点 | 第74页 |
| 2.2 不足之处 | 第74页 |
| 3 研究展望 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文和专利申请 | 第85页 |
