致谢 | 第7-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
第一章 绪论 | 第17-25页 |
1.1 实验材料简介 | 第17页 |
1.2 植物抗旱的研究进展 | 第17-20页 |
1.2.1 干旱胁迫对植物的影响 | 第17-18页 |
1.2.2 植物对干旱胁迫的响应 | 第18-19页 |
1.2.3 干旱胁迫下对其它生理过程的影响 | 第19页 |
1.2.4 植物抗旱的机制 | 第19-20页 |
1.3 植物抗寒的研究进展 | 第20-23页 |
1.3.1 低温逆境对植物的影响 | 第20-21页 |
1.3.2 冷信号的感知和转导 | 第21页 |
1.3.3 冷信号的响应 | 第21-23页 |
1.4 脯氨酸:一种多功能氨基酸 | 第23-24页 |
1.4.1 脯氨酸在植物体内的积累 | 第23页 |
1.4.2 植物中脯氨酸的代谢 | 第23-24页 |
1.5 CBF1基因的研究进展与研究意义 | 第24-25页 |
第二章 实验材料与方法 | 第25-43页 |
2.1 实验材料 | 第25页 |
2.1.1 植物材料 | 第25页 |
2.1.2 菌株与质粒 | 第25页 |
2.2 主要试剂 | 第25-30页 |
2.2.1 常用分子生物学试剂盒 | 第25页 |
2.2.2 常用酶类 | 第25页 |
2.2.3 常用生化试剂 | 第25-26页 |
2.2.4 常用溶液与试剂的配制 | 第26-30页 |
2.3 主要仪器与设备 | 第30-31页 |
2.4 实验方法 | 第31-43页 |
2.4.1 灭菌方法 | 第31页 |
2.4.2 实验中植株的种植和培养 | 第31-33页 |
2.4.3 大肠杆菌DH5α菌株感受态的制备过程 | 第33页 |
2.4.4 农杆菌GV3101感受态的制备 | 第33-34页 |
2.4.5 质粒DNA提取(Kit) | 第34页 |
2.4.6 重组载体的构建 | 第34-35页 |
2.4.7 植物基因组DNA的提取(CTAB法) | 第35-36页 |
2.4.8 基因定量qRT-PCR | 第36-37页 |
2.4.9 实验中定量引物 | 第37-38页 |
2.4.10 游离脯氨酸的测定方法 | 第38-39页 |
2.4.11 可溶性糖的测定 | 第39-40页 |
2.4.12 植株的干旱和低温胁迫 | 第40页 |
2.4.13 离体植株、叶片的失水率测定 | 第40-41页 |
2.4.14 低温胁迫下电导率的测定 | 第41页 |
2.4.15 低温胁迫下叶绿素的测定 | 第41-42页 |
2.4.16 P5CS酶活力测定 | 第42页 |
2.4.17 实验数据统计分析及处理 | 第42-43页 |
第三章 实验结果与分析 | 第43-60页 |
3.1 苏州青、黄心乌菜和黑心乌菜生长不同时期发育表型 | 第43-44页 |
3.2 黑心乌菜相对于苏州青和黄心乌菜对低温胁迫更加耐受 | 第44-47页 |
3.2.1 苏州青、黄心乌菜和黑心乌菜对低温胁迫的响应 | 第44-45页 |
3.2.2 苏州青、黄心乌菜和黑心乌菜在低温胁迫下的存活率和电导率 | 第45-47页 |
3.3 黑心乌菜相对于苏州青和黄心乌菜对干旱胁迫更加耐受 | 第47-49页 |
3.3.1 苏州青、黄心乌菜和黑心乌菜对干旱胁迫的响应 | 第47-48页 |
3.3.2 苏州青、黄心乌菜、黑心乌菜干旱存活率和失水率 | 第48-49页 |
3.4 黑心乌菜体内脯氨酸积累导致对干旱胁迫的耐受 | 第49-51页 |
3.4.1 低温、干旱胁迫下苏州青、黄心乌菜和黑心乌菜体内可溶性糖含量 | 第49-50页 |
3.4.2 低温、干旱胁迫下苏州青、黄心乌菜和黑心乌菜体内脯氨酸含量 | 第50-51页 |
3.6 低温、干旱胁迫下脯氨酸代谢途径相关基因表达 | 第51-53页 |
3.7 干旱胁迫下P5CS酶活的测定 | 第53-54页 |
3.8 低温胁迫下CBF途径相关基因表达 | 第54-56页 |
3.9 35S:BrCBF1转化拟南芥转基因株系的获得 | 第56-58页 |
3.9.1 BrCBF1基因过表达载体构建 | 第57-58页 |
3.9.2 BrCBF1基因过表达转基因株系的筛选与鉴定 | 第58页 |
3.10 BrCBF1基因拟南芥转基因植株的发育表型 | 第58-60页 |
第四章 讨论与展望 | 第60-62页 |
4.1 结果与讨论 | 第60-61页 |
4.2 后续工作展望 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-67页 |
攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第67页 |