| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7页 |
| 1． 前言 | 第14-24页 |
| 1．1 研究背景 | 第14-16页 |
| 1．2 选题依据 | 第16-18页 |
| 1．3 实验方案 | 第18-19页 |
| 1．4 研究目的及意义 | 第19页 |
| 参考文献 | 第19-24页 |
| 2． 文献综述 | 第24-55页 |
| 2．1 细胞凋亡与脑缺血-再灌注 | 第24-28页 |
| 2．2 微管相关蛋白2(MAP-2)与脑缺血-再灌注 | 第28-31页 |
| 2．2．1 MAP-2的结构、分布和功能 | 第29-31页 |
| 2．2．2 脑缺血后MAP-2的变化 | 第31页 |
| 2．3 海马、学习记忆与脑缺血-再灌注 | 第31-33页 |
| 2．3．1 海马与学习记忆功能的关系 | 第31-32页 |
| 2．3．2 脑缺血后学习记忆功能的改变 | 第32-33页 |
| 2．4 脑缺血-再灌注损伤机制 | 第33-37页 |
| 2．4．1 兴奋性氨基酸毒性与钙超载 | 第33页 |
| 2．4．2 炎症 | 第33-34页 |
| 2．4．3 神经营养因子不足 | 第34-35页 |
| 2．4．4 自由基 | 第35-37页 |
| 2．5 神经细胞的修复与再生 | 第37-39页 |
| 2．5．1 神经干细胞的发现、分布和定位 | 第37页 |
| 2．5．2 脑缺血再灌注损伤后神经干细胞的变化 | 第37-38页 |
| 2．5．3 神经干细胞分化与神经生长因子 | 第38-39页 |
| 2．6 脑缺血治疗进展 | 第39-41页 |
| 2．6．1 药物治疗 | 第39-41页 |
| 2．6．2 基因治疗 | 第41页 |
| 2．6．3 神经干细胞移植 | 第41页 |
| 2．7 脑缺血动物模型进展 | 第41-44页 |
| 2．7．1 常用的全脑缺血损伤模型 | 第42-43页 |
| 2．7．1．1 两血管闭塞法 | 第42页 |
| 2．7．1．2 四血管闭塞法 | 第42-43页 |
| 2．7．1．3 沙土鼠脑缺血模型 | 第43页 |
| 2．7．2 常用的局灶性脑缺血损伤模型 | 第43-44页 |
| 2．7．3 脑缺血损伤的影响因素 | 第44页 |
| 参考文献 | 第44-55页 |
| 3． 梓醇在脑缺血再灌注动物模型中短期应用的神经活性作用 | 第55-79页 |
| 3．1 材料及设备 | 第55-56页 |
| 3．1．1 实验材料 | 第56页 |
| 3．1．2 实验设备 | 第56页 |
| 3．2 实验方法 | 第56-63页 |
| 3．2．1 实验动物 | 第57页 |
| 3．2．2 药物配制 | 第57页 |
| 3．2．3 梓醇药物剂量确定 | 第57页 |
| 3．2．4 梓醇应用方案 | 第57-58页 |
| 3．2．4．1 梓醇在脑缺血损伤动物中的作用 | 第57-58页 |
| 3．2．4．1．1 梓醇剂量效应 | 第57页 |
| 3．2．4．1．2 梓醇有效治疗时间窗 | 第57-58页 |
| 3．2．4．1．3 梓醇长期效应 | 第58页 |
| 3．2．4．2 梓醇在无脑缺血损伤动物中的作用 | 第58页 |
| 3．2．5 脑缺血-再灌注模型制备 | 第58页 |
| 3．2．6 行为实验 | 第58-60页 |
| 3．2．7 脑组织处理及准备 | 第60页 |
| 3．2．8 脑组织病理染色 | 第60-61页 |
| 3．2．8．1 尼氏小体染色 | 第60-61页 |
| 3．2．8．2 苏木—伊红染色 | 第61页 |
| 3．2．9 海马CA1区存活神经元计数 | 第61页 |
| 3．2．10 MAP-2免疫活性 | 第61-62页 |
| 3．2．11 氯化三苯基四氮唑染色 | 第62页 |
| 3．2．12 梗死面积测定 | 第62-63页 |
| 3．2．13 统计学方法 | 第63页 |
| 3．3 实验结果 | 第63-73页 |
| 3．3．1 梓醇剂量确定 | 第63页 |
| 3．3．2 行为实验 | 第63-67页 |
| 3．3．3 海马CA1区存活神经元细胞计数 | 第67-71页 |
| 3．3．4 MAP-2免疫活性 | 第71-72页 |
| 3．3．5 梗死面积 | 第72-73页 |
| 3．4 讨论 | 第73-75页 |
| 3．5 小结 | 第75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| 4． 梓醇短期应用神经活性作用机制探讨 | 第79-104页 |
| 4．1 实验材料及设备 | 第80-82页 |
| 4．1．1 实验材料 | 第80-81页 |
| 4．1．2 实验设备 | 第81-82页 |
| 4．2 实验方法 | 第82-89页 |
| 4．2．1 实验动物分组、给药及饲养 | 第82页 |
| 4．2．2 脑缺血—再灌注模型制备 | 第82页 |
| 4．2．3 脑组织处理及准备 | 第82-83页 |
| 4．2．4 尼氏小体染色(Nissl) | 第83页 |
| 4．2．5 海马CA1区存活神经元计数 | 第83页 |
| 4．2．6 透射电镜观察海马CA1区锥体神经元超微结构 | 第83页 |
| 4．2．7 原位细胞死亡检测凋亡神经元 | 第83页 |
| 4．2．8 海马CA1区凋亡神经元记数 | 第83-84页 |
| 4．2．9 流式细胞仪定量分析凋亡细胞峰 | 第84页 |
| 4．2．10 梗死面积测定 | 第84页 |
| 4．2．11 免疫组化检测Bcl-2和Bax蛋白免疫活性 | 第84-85页 |
| 4．2．12 组织蛋白测定 | 第85-86页 |
| 4．2．12．1 考马斯亮兰法 | 第85页 |
| 4．2．12．2 双缩脉法 | 第85-86页 |
| 4．2．13 超氧化物歧化酶活力 | 第86页 |
| 4．2．14 谷胱甘肽过氧化物酶活力 | 第86-87页 |
| 4．2．15 过氧化氢酶活力 | 第87页 |
| 4．2．16 一氧化氮合成酶活力 | 第87-88页 |
| 4．2．17 丙二醛含量 | 第88-89页 |
| 4．2．18 统计学方法 | 第89页 |
| 4．3 实验结果 | 第89-93页 |
| 4．3．1 电镜下海马CA1区神经元形态 | 第89页 |
| 4．3．2 海马CA1区存活神经元、TUNEL、Bcl-2和Bax阳性神经元记数 | 第89-90页 |
| 4．3．3 细胞凋亡峰定量分析和脑梗死面积测定 | 第90-93页 |
| 4．3．4 SOD、GSH-Px和CAT的活性 | 第93页 |
| 4．3．5 MDA含量 | 第93页 |
| 4．3．6 TNOS和iNOS活性 | 第93页 |
| 4．4 讨论 | 第93-99页 |
| 4．5 小结 | 第99页 |
| 参考文献 | 第99-104页 |
| 5． 梓醇长期应用的神经活性作用 | 第104-112页 |
| 5．1 实验材料及设备 | 第104-105页 |
| 5．1．1 实验材料 | 第104页 |
| 5．1．2 实验设备 | 第104-105页 |
| 5．2 实验方法 | 第105-106页 |
| 5．2．1 实验动物及饲养 | 第105页 |
| 5．2．2 动物筛选 | 第105页 |
| 5．2．3 梓醇应用方案 | 第105-106页 |
| 5．2．3．1 梓醇在脑缺血损伤动物中的作用 | 第105页 |
| 5．2．3．2 梓醇在无脑缺血损伤动物中的作用 | 第105-106页 |
| 5．2．4 脑缺血-再灌注模型制备 | 第106页 |
| 5．2．5 行为实验 | 第106页 |
| 5．2．6 统计学方法 | 第106页 |
| 5．3 实验结果 | 第106-108页 |
| 5．3．1 梓醇延迟6小时应用对脑缺血动物学习记忆功能的影响 | 第106-107页 |
| 5．3．2 梓醇对认知能力低下动物学习记忆功能的影响 | 第107-108页 |
| 5．4 讨论 | 第108-109页 |
| 5．5 小结 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-112页 |
| 6． 结论与创新 | 第112-114页 |
| 6．1 主要结论 | 第112-113页 |
| 6．2 论文创新点 | 第113-114页 |
| 缩略语 | 第114-115页 |
| 发表论文 | 第115-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
| 展望 | 第118-119页 |
| 大连理工大学学位论文版权使用授权书 | 第119-120页 |
| 个人简介 | 第120页 |
