| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 縮略语表 | 第10-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-25页 |
| 1.1 食源性肽概述 | 第16-22页 |
| 1.1.1 食源性肽的吸收机制 | 第16-17页 |
| 1.1.2 食源性肽的功能活性 | 第17-19页 |
| 1.1.3 食源性肽的制备 | 第19-21页 |
| 1.1.4 食源性肽的分离纯化 | 第21页 |
| 1.1.5 食源性肽的分析及结构鉴定 | 第21-22页 |
| 1.2 成纤维细胞概述 | 第22-24页 |
| 1.2.1 成纤维细胞的来源 | 第22页 |
| 1.2.2 成纤维细胞的生物学特性 | 第22-23页 |
| 1.2.3 成纤维细胞与伤口愈合 | 第23-24页 |
| 1.3 本研究主要内容 | 第24页 |
| 1.4 本研究的创新性 | 第24-25页 |
| 第2章 食源性肽WY和WJ对HSF细胞增殖影响 | 第25-37页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第25-26页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.3.1 HSF细胞的培养 | 第26-27页 |
| 2.3.2 胰蛋白酶消化液浓度的确定 | 第27页 |
| 2.3.3 HSF细胞最适接种个数研究 | 第27页 |
| 2.3.4 MTT细胞活力分析 | 第27-28页 |
| 2.3.5 食源性肽WY和WJ对HSF细胞生长曲线的影响 | 第28页 |
| 2.4 结果与分析 | 第28-35页 |
| 2.4.1 HSF细胞形态学观察 | 第28-29页 |
| 2.4.2 不同浓度消化液对HSF细胞消化效果影响 | 第29-30页 |
| 2.4.3 不同接种个数对HSF细胞生长曲线的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.4 食源性肽WY和WJ对HSF细胞72h的增殖作用 | 第31-32页 |
| 2.4.5 食源性肽WY和WJ对HSF细胞10d的增殖作用 | 第32-35页 |
| 本章小结 | 第35-37页 |
| 第3章 食源性肽WY和WJ的理化性质研究 | 第37-51页 |
| 3.1 引言 | 第37-38页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第38页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第38页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第38页 |
| 3.3 实验方法 | 第38-39页 |
| 3.3.1 食源性肽WY和WJ及其分离组分中蛋白质含量测定 | 第38页 |
| 3.3.2 食源性肽WY和WJ及其分离组分分子量的分布 | 第38页 |
| 3.3.3 食源性肽WY和WJ及其分离组分氨基酸组成分析 | 第38-39页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第39-50页 |
| 3.4.1 WY及其分离组分蛋白含量测定 | 第39页 |
| 3.4.2 分子量测定标准曲线的绘制 | 第39-42页 |
| 3.4.3 WY及其分离组分分子量的分布 | 第42-45页 |
| 3.4.4 WJ及其分离组分分子量的分布 | 第45-48页 |
| 3.4.5 食源性肽WY和WJ及其分离组分氨基酸组成分析 | 第48-50页 |
| 本章小结 | 第50-51页 |
| 第4章 食源性肽WY和WJ对5-FU诱导HSF细胞损伤的保护作用 | 第51-66页 |
| 4.1 引言 | 第51-52页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第52页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第52页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第52页 |
| 4.3 实验方法 | 第52-54页 |
| 4.3.1 人成纤维细胞的培养 | 第52-53页 |
| 4.3.2 5-FU损伤模型建立 | 第53页 |
| 4.3.3 实验分组及给药 | 第53页 |
| 4.3.4 MTT法测定HSF细胞存活率 | 第53页 |
| 4.3.5 单细胞凝胶电泳法检测细胞DNA损伤 | 第53-54页 |
| 4.3.6 统计分析 | 第54页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第54-64页 |
| 4.4.1 不同浓度5-FU对HSF细胞存活率的影响 | 第54-55页 |
| 4.4.2 不同浓度5-FU对HSF细胞DNA损伤作用 | 第55-56页 |
| 4.4.3 肌肽不同处理方式对5-FU诱导HSF细胞增殖抑制的保护作用 | 第56-57页 |
| 4.4.4 WY及其分离组分对5-FU抑制HSF细胞增殖影响 | 第57-58页 |
| 4.4.5 WJ及其分离组分对5-FU抑制HSF细胞增殖影响 | 第58-59页 |
| 4.4.6 WY分离组分和WJ分离组分对5-FU抑制HSF细胞增殖影响 | 第59-62页 |
| 4.4.7 WJ和WY对5-FU所致HSF细胞DNA损伤保护作用 | 第62-64页 |
| 本章小结 | 第64-66页 |
| 第5章 食源性肽WY和WJ对H_2O_2诱导HSF细胞氧化应激损伤的保护作用 | 第66-77页 |
| 5.1 引言 | 第66-67页 |
| 5.2 实验材料与设备 | 第67-68页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第67-68页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第68页 |
| 5.3 实验方法 | 第68-69页 |
| 5.3.1 MTT法测定HSF细胞存活率 | 第68页 |
| 5.3.2 H_2O_2导HSF细胞损伤模型建立 | 第68页 |
| 5.3.3 实验分组及给药处理 | 第68-69页 |
| 5.3.4 食源性肽WY和WJ对H_2O_2诱导HSF细胞增殖抑制作用研究 | 第69页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第69-76页 |
| 5.4.1 HSF细胞的形态学观察 | 第69-70页 |
| 5.4.3 体外H_2O_2诱导HSF细胞氧化应激损伤模型的建立 | 第70-71页 |
| 5.4.4 肌肽不同处理方式对HSF细胞存活率的影响 | 第71页 |
| 5.4.5 食源性肽WY和WJ对H_2O_2诱导HSF细胞氧化应激损伤的作用 | 第71-76页 |
| 本章小结 | 第76-77页 |
| 第6章 食源性肽WY和WJ对H22细胞的增殖作用影响 | 第77-87页 |
| 6.1 引言 | 第77-78页 |
| 6.2 实验材料与设备 | 第78页 |
| 6.2.1 材料与试剂 | 第78页 |
| 6.2.2 仪器与设备 | 第78页 |
| 6.3 实验方法 | 第78-79页 |
| 6.3.3 MTT法测定细胞存活率 | 第78-79页 |
| 6.3.4 实验分组及给药处理 | 第79页 |
| 6.3.5 食源性肽WY和WJ对H22细胞增殖抑制的研究 | 第79页 |
| 6.3.6 食源性肽WY和WJ与5-FU配伍诱导H22细胞损伤的研究 | 第79页 |
| 6.3.7 流式细胞仪测定细胞周期 | 第79页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第79-85页 |
| 6.4.0 WY及其分离组分对H22增殖作用影响 | 第80页 |
| 6.4.1 WJ及其分离组分对H22增殖作用影响 | 第80-81页 |
| 6.4.2 WY和WJ对5-FU诱导H22损伤作用的影响 | 第81-84页 |
| 6.4.3 WY对H22细胞周期的影响 | 第84页 |
| 6.4.4 WJ对H22细胞周期的影响 | 第84页 |
| 6.4.5 WY-2和WJ-1对H22细胞周期的影响 | 第84-85页 |
| 6.4.6 肌肽对H22细胞周期的影响 | 第85页 |
| 本章小结 | 第85-87页 |
| 第7章 结论与展望 | 第87-91页 |
| 7.1 结论 | 第87-89页 |
| 7.2 进一步工作方向 | 第89-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-98页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第98页 |
