| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-30页 |
| ·蜂胶及其理化性质 | 第13页 |
| ·蜂胶的主要成分 | 第13-20页 |
| ·蜂胶中的黄酮类化合物 | 第14-17页 |
| ·酚酸及其酯类化合物 | 第17-20页 |
| ·其他类化合物 | 第20页 |
| ·蜂胶的主要功能 | 第20-27页 |
| ·蜂胶抗病原微生物作用 | 第21-23页 |
| ·蜂胶抗氧化作用 | 第23-24页 |
| ·蜂胶抗炎作用 | 第24-25页 |
| ·蜂胶抗肿瘤作用 | 第25-26页 |
| ·蜂胶的其他功能 | 第26-27页 |
| ·人肝癌细胞株HepG2 细胞简介 | 第27页 |
| ·本论文的立题背景和研究内容 | 第27-30页 |
| ·立题背景和意义 | 第27-28页 |
| ·研究内容 | 第28-30页 |
| 第二章 采集方法对蜂胶提取率及组分含量的影响 | 第30-38页 |
| ·引言 | 第30页 |
| ·材料与设备 | 第30-31页 |
| ·材料与试剂 | 第30-31页 |
| ·仪器与设备 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-33页 |
| ·蜂胶提取物工艺 | 第31-32页 |
| ·蜂胶不同提取物的得率测定 | 第32页 |
| ·蜂胶不同提取物的制备 | 第32页 |
| ·蜂胶不同提取物中总酚含量测定 | 第32页 |
| ·蜂胶不同提取物中总黄酮含量测定 | 第32-33页 |
| ·数据处理 | 第33页 |
| ·结果与分析 | 第33-37页 |
| ·蜂胶不同提取方法的分析 | 第33-34页 |
| ·总酚和总黄酮标准曲线的绘制 | 第34-35页 |
| ·蜂胶不同提取物的得率、总酚和总黄酮含量 | 第35-37页 |
| ·本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 蜂胶提取物的HPLC-ESI-MS/MS分析 | 第38-59页 |
| ·引言 | 第38页 |
| ·材料与设备 | 第38-39页 |
| ·材料与试剂 | 第38-39页 |
| ·仪器与设备 | 第39页 |
| ·实验方法 | 第39-41页 |
| ·蜂胶提取物溶液的制备 | 第39页 |
| ·标准对照品溶液的制备 | 第39页 |
| ·HPLC色谱条件 | 第39-40页 |
| ·线性关系考察 | 第40页 |
| ·精密度、稳定性和重复性实验 | 第40页 |
| ·色谱峰初步定性 | 第40页 |
| ·HPLC-ESI-MS/MS分析 | 第40页 |
| ·组分定量分析 | 第40页 |
| ·加标回收率实验 | 第40-41页 |
| ·结果与分析 | 第41-57页 |
| ·色谱条件的选择 | 第41页 |
| ·不同标准品的混合 | 第41页 |
| ·线性关系的考察 | 第41-42页 |
| ·精密度、稳定性和重复性实验 | 第42-43页 |
| ·不同提取方法对蜂胶组分的影响 | 第43-47页 |
| ·蜂胶提取物的HPLC-ESI-MS/MS分析 | 第47-54页 |
| ·不同提取方法对蜂胶中酚类化合物含量的影响 | 第54-56页 |
| ·加标回收率实验结果 | 第56-57页 |
| ·本章小结 | 第57-59页 |
| 第四章 蜂胶提取物的抗氧化活性研究 | 第59-86页 |
| ·引言 | 第59-60页 |
| ·实验材料与仪器设备 | 第60-61页 |
| ·材料与试剂 | 第60页 |
| ·仪器与设备 | 第60-61页 |
| ·实验方法 | 第61-65页 |
| ·总抗氧化力（TEAC）的测定 | 第61页 |
| ·清除DPPH自由基能力 | 第61-62页 |
| ·还原力能力的测定 | 第62页 |
| ·细胞模型测定抗氧化能力 | 第62-65页 |
| ·数据处理与统计分析 | 第65页 |
| ·结果与分析 | 第65-85页 |
| ·蜂胶不同提取物清除DPPH自由基能力 | 第65-67页 |
| ·蜂胶不同提取物清除ABTS自由基能力 | 第67-69页 |
| ·蜂胶不同提取物的还原力 | 第69-70页 |
| ·蜂胶提取物抗氧化能力与总酚、总黄酮的相关性 | 第70-73页 |
| ·蜂胶不同提取物的细胞内抗氧化（CAA）能力 | 第73-85页 |
| ·本章小结 | 第85-86页 |
| 第五章 蜂胶提取物对HepG2 细胞增殖和凋亡的影响 | 第86-115页 |
| ·引言 | 第86-87页 |
| ·材料与设备 | 第87-89页 |
| ·实验材料与试剂 | 第87-88页 |
| ·仪器和设备 | 第88-89页 |
| ·实验方法 | 第89-95页 |
| ·细胞培养 | 第89页 |
| ·MTT法检测蜂胶提取物对HepG2 细胞的增殖活性 | 第89页 |
| ·Annexin V-FITC/ PI试剂盒检测细胞凋亡 | 第89-91页 |
| ·线粒体膜电位检测试剂盒测定早期凋亡细胞 | 第91-92页 |
| ·TUNEL试剂盒检测晚期细胞凋亡 | 第92-93页 |
| ·DNA Ladder试剂盒检测凋亡晚期细胞的DNA片断 | 第93-94页 |
| ·HepG2 细胞周期的测定 | 第94-95页 |
| ·数据处理 | 第95页 |
| ·结果与分析 | 第95-113页 |
| ·蜂胶不同提取物对HepG2 细胞增殖的影响 | 第95-96页 |
| ·倒置显微镜观察蜂胶提取物对细胞凋亡的影响 | 第96-99页 |
| ·Annexin V-FITC/PI试剂盒测定细胞凋亡 | 第99-104页 |
| ·JC-1 试剂盒测定细胞线粒体膜电位的变化 | 第104-108页 |
| ·TUNEL试剂盒测定细胞晚期凋亡率 | 第108-110页 |
| ·DNA Ladder提取试剂盒测定凋亡晚期细胞 | 第110页 |
| ·蜂胶提取物对HepG2 细胞周期的影响 | 第110-113页 |
| ·本章小结 | 第113-115页 |
| 结论与展望 | 第115-118页 |
| 一、结论 | 第115-117页 |
| 二、创新点 | 第117页 |
| 三、展望 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-135页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第135-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
| 附件 | 第137页 |
