摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-22页 |
1.1 课题背景 | 第11页 |
1.2 工业区水体毒性评价研究进展 | 第11-13页 |
1.2.1 全排水毒性评价的必要性 | 第11-12页 |
1.2.2 全排水毒性评价体系的指标 | 第12-13页 |
1.3 水体内分泌干扰性检测方法介绍 | 第13-16页 |
1.3.1 内分泌干扰物质常用生物检测方法 | 第13-14页 |
1.3.2 基因重组酵母法在国内的应用现状 | 第14页 |
1.3.3 基于植酸酶报告基因的基因重组酵母法 | 第14-16页 |
1.4 环境水体被动采样器概述 | 第16-20页 |
1.4.1 被动采样器发展历程 | 第16页 |
1.4.2 被动采样器的结构 | 第16-17页 |
1.4.3 被动采样器的动力学模型简介 | 第17-20页 |
1.5 课题来源及研究目的和意义 | 第20页 |
1.5.1 课题来源 | 第20页 |
1.5.2 课题研究目的和意义 | 第20页 |
1.6 课题研究内容及技术路线 | 第20-22页 |
1.6.1 本研究的研究内容 | 第20页 |
1.6.2 技术路线 | 第20-22页 |
第2章 实验材料与方法 | 第22-28页 |
2.1 实验试剂与仪器 | 第22-23页 |
2.1.1 菌种来源与保藏 | 第22页 |
2.1.2 主要试剂 | 第22页 |
2.1.3 实验仪器及设备 | 第22-23页 |
2.2 主要溶液及培养基配置方法 | 第23-24页 |
2.2.1 主要溶液配制 | 第23-24页 |
2.2.2 培养基的配制 | 第24页 |
2.3 实验装置 | 第24-25页 |
2.4 重组酵母检测内分泌干扰性的步骤 | 第25-26页 |
2.5 被动采样器的试验方法 | 第26-27页 |
2.5.1 被动采样器的实验准备和色谱条件 | 第26页 |
2.5.2 被动采样器的试验方法 | 第26-27页 |
2.6 质量控制 | 第27-28页 |
第3章 水样内分泌干扰性检测方法优化 | 第28-37页 |
3.1 基因重组酵母法的检测条件优化 | 第28-34页 |
3.1.1 碳源对酵母菌报告基因表达的影响 | 第28-29页 |
3.1.2 菌液浓度对报告基因表达的影响 | 第29-31页 |
3.1.3 接触培养时间对报告基因表达影响 | 第31-32页 |
3.1.4 酶反应时间对报告基因表达的影响 | 第32页 |
3.1.5 酵母菌传代对报告基因表达的影响 | 第32-33页 |
3.1.6 盐度对酵母菌植酸酶表达的影响 | 第33-34页 |
3.2 典型内分泌干扰物质的效应曲线 | 第34-35页 |
3.3 本章小结 | 第35-37页 |
第4章 极性一体化被动采样器研究 | 第37-49页 |
4.1 被动采样器的吸附剂选取 | 第37-39页 |
4.1.1 常用吸附剂的优缺点 | 第37-38页 |
4.1.2 填料C18和HLB作为吸附剂的比选 | 第38-39页 |
4.2 被动采样器的洗脱方法 | 第39-40页 |
4.3 水环境中被动采样器采样特性研究 | 第40-48页 |
4.3.1 被动采样器的吸附特性验证 | 第41-42页 |
4.3.2 目标物浓度对被动采样器的影响 | 第42-43页 |
4.3.3 盐度对被动采样器采样的影响 | 第43-44页 |
4.3.4 温度对被动采样器采样的影响 | 第44-45页 |
4.3.5 水的pH对被动采样器的影响 | 第45-46页 |
4.3.6 搅拌转速对被动采样器的影响 | 第46-48页 |
4.4 本章小结 | 第48-49页 |
第5章 基于被动采样的水体内分泌干扰性评价 | 第49-60页 |
5.1 内分泌干扰物被动采样的实验室校核 | 第49-54页 |
5.1.1 温度对被动采集内分泌干扰物的影响 | 第49-51页 |
5.1.2 盐度对被动采集内分泌干扰物的影响 | 第51页 |
5.1.3 pH对被动采集内分泌干扰物的影响 | 第51-52页 |
5.1.4 转速对被动采集内分泌干扰物的影响 | 第52-54页 |
5.2 工业区水体的内分泌干扰活性筛查 | 第54-59页 |
5.2.1 龙岗河采样点介绍和现场采样 | 第54-55页 |
5.2.2 基于基因重组酵母法的被动采样器现场校核 | 第55-57页 |
5.2.3 龙岗河内分泌干扰活性的评估 | 第57-59页 |
5.3 本章小结 | 第59-60页 |
结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-68页 |
致谢 | 第68页 |