| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 综述 | 第13-27页 |
| 1 食用菌概述 | 第13页 |
| 2 绣球菌简介 | 第13-18页 |
| 2.1 绣球菌的化学活性成分 | 第14-16页 |
| 2.2 绣球菌的药理作用 | 第16-17页 |
| 2.3 绣球菌开发及存在的问题 | 第17-18页 |
| 2.3.1 绣球菌的开发 | 第17页 |
| 2.3.2 存在的问题 | 第17-18页 |
| 3 食用菌多糖概述 | 第18-25页 |
| 3.1 食用菌多糖提取方法 | 第18-21页 |
| 3.1.1 水提醇沉法 | 第18-19页 |
| 3.1.2 微碱法提取多糖 | 第19页 |
| 3.1.3 酸提取法 | 第19页 |
| 3.1.4 超声波辅助提取法 | 第19-20页 |
| 3.1.5 微波辅助提取法 | 第20页 |
| 3.1.6 超高压提取法 | 第20页 |
| 3.1.7 酶法提取 | 第20-21页 |
| 3.2 食用菌多糖的分离纯化及结构鉴定 | 第21-25页 |
| 3.2.1 脱蛋白 | 第22-23页 |
| 3.2.2 脱色素 | 第23页 |
| 3.2.3 脱除小分子 | 第23页 |
| 3.2.4 纯化 | 第23-24页 |
| 3.2.5 多糖分子结构鉴定 | 第24-25页 |
| 4 本课题研究的目的和意义 | 第25-26页 |
| 5 本课题研究的内容 | 第26页 |
| 6 本课题创新点 | 第26-27页 |
| 第二章 复合酶法提取绣球菌多糖 | 第27-43页 |
| 1 材料与方法 | 第27-28页 |
| 1.1 试验材料 | 第27页 |
| 1.2 试验主要试剂 | 第27-28页 |
| 1.3 试验设备 | 第28页 |
| 2 试验内容及方法 | 第28-31页 |
| 2.1 酶法提取绣球菌多糖的方法 | 第28-29页 |
| 2.1.1 葡萄糖标准曲线绘制 | 第28页 |
| 2.1.2 绣球菌多糖提取率的测定 | 第28-29页 |
| 2.2 复合酶的复配比试验 | 第29页 |
| 2.2.1 酶提取绣球菌多糖的单因素试验设计 | 第29页 |
| 2.2.2 复合酶用量配比正交试验 | 第29页 |
| 2.3 复合酶法酶解工艺的优化 | 第29-31页 |
| 2.3.1 酶解pH值对多糖提取率的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.2 酶解时间对多糖提取率的影响 | 第30页 |
| 2.3.3 酶解温度对多糖提取率的影响 | 第30页 |
| 2.3.4 料液比对多糖提取率的影响 | 第30页 |
| 2.3.5 二次通用旋转组合试验设计 | 第30-31页 |
| 3 实验结果及分析 | 第31-43页 |
| 3.1 葡萄糖标准曲线绘制 | 第31页 |
| 3.2 复合酶最佳配比单因素试验 | 第31-33页 |
| 3.2.1 纤维素酶添加量的选择 | 第31-32页 |
| 3.2.2 木瓜蛋白酶添加量的选择 | 第32页 |
| 3.2.3 果胶酶添加量的选择 | 第32-33页 |
| 3.3 三种酶复合配比正交试验结果与分析 | 第33-34页 |
| 3.4 酶解条件的单因素试验 | 第34-36页 |
| 3.4.1 酶解pH值对绣球菌多糖提取率的影响 | 第34-35页 |
| 3.4.2 酶解时间对绣球菌多糖提取率的影响 | 第35页 |
| 3.4.3 酶解温度对绣球菌多糖提取率的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.4 料液比对绣球菌多糖提取率的影响 | 第36页 |
| 3.5 复合酶提取绣球菌多糖中心组合试验 | 第36-43页 |
| 3.5.1 分析水平选取及分析方案 | 第36-37页 |
| 3.5.2 中心组合试验结果 | 第37页 |
| 3.5.3 回归模型的建立与方差分析 | 第37-39页 |
| 3.5.4 单因子效应分析 | 第39页 |
| 3.5.5 因素间互作效应分析 | 第39-42页 |
| 3.5.6 最佳条件优化及结果验证 | 第42-43页 |
| 第三章 绣球菌多糖的脱蛋白工艺研究及分离纯化 | 第43-61页 |
| 1 材料、设备及方法 | 第43-48页 |
| 1.1 材料与设备 | 第43-44页 |
| 1.1.1 材料 | 第43页 |
| 1.1.2 仪器设备 | 第43-44页 |
| 1.2 试验内容与方法 | 第44-45页 |
| 1.2.1 绣球菌粗多糖制备的试验流程 | 第44页 |
| 1.2.2 多糖含量测定 | 第44页 |
| 1.2.3 蛋白质含量测定 | 第44-45页 |
| 1.2.3 计算方法 | 第45页 |
| 1.3 脱蛋白工艺试验研究 | 第45-46页 |
| 1.3.1 Sevage法 | 第45页 |
| 1.3.2 TCA法 | 第45-46页 |
| 1.3.3 酶法 | 第46页 |
| 1.3.4 氯化钙法 | 第46页 |
| 1.3.5 盐酸法 | 第46页 |
| 1.4 TCA法脱蛋白工艺优化 | 第46页 |
| 1.4.1 单因素试验设计 | 第46页 |
| 1.4.2 正交试验设计 | 第46页 |
| 1.5 紫外光谱分析 | 第46-47页 |
| 1.6 绣球菌多糖分级纯化 | 第47-48页 |
| 1.6.1 透析 | 第47页 |
| 1.6.2 DEAE-52纤维素阴离子交换柱层析 | 第47-48页 |
| 1.6.3 Sephadex G-100凝胶柱分离 | 第48页 |
| 2 试验结果与分析 | 第48-59页 |
| 2.1 sevage法脱蛋白脱除次数及其效果分析 | 第48-49页 |
| 2.2 对比几种脱蛋白的效果 | 第49-59页 |
| 2.2.1 TCA法脱蛋白 | 第50-57页 |
| 2.2.2 多糖分级纯化结果 | 第57-59页 |
| 3 本章小结 | 第59-61页 |
| 第四章 绣球菌多糖体外抗氧化活性研究 | 第61-73页 |
| 1 材料与方法 | 第62-67页 |
| 1.1 材料与设备 | 第62页 |
| 1.1.1 材料与试剂 | 第62页 |
| 1.1.2 仪器设备 | 第62页 |
| 1.2 试验方法 | 第62-67页 |
| 1.2.1 绣球菌多糖含量测定及浓度的调制 | 第62页 |
| 1.2.2 抑制羟自由基能力的测定 | 第62-64页 |
| 1.2.3 抗超氧阴离子的测定 | 第64-65页 |
| 1.2.4 总抗氧化能力的测定 | 第65-66页 |
| 1.2.5 清除1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)能力的测定 | 第66-67页 |
| 2 结果及分析 | 第67-71页 |
| 2.1 清除羟自由基的能力 | 第67-68页 |
| 2.2 抗超氧阴离子的能力 | 第68-69页 |
| 2.3 总抗氧化能力的测定结果 | 第69-70页 |
| 2.4 对DPPH的清除作用 | 第70-71页 |
| 3 本章小结 | 第71-73页 |
| 第五章 多糖分子结构鉴定研究 | 第73-81页 |
| 1 材料与方法 | 第74页 |
| 1.1 材料、试剂与设备 | 第74页 |
| 1.2 试验方法 | 第74页 |
| 1.2.1 红外光谱法样品处理 | 第74页 |
| 1.2.2 核磁共振谱样品处理 | 第74页 |
| 2 试验结果 | 第74-80页 |
| 2.1 红外光谱分析 | 第74-77页 |
| 2.1.1 SC1-1的红外光谱分析 | 第74-76页 |
| 2.1.2 SC2-1的红外光谱分析 | 第76-77页 |
| 2.2 核磁共振分析 | 第77-80页 |
| 2.2.1 SC1-1的核磁共振分析 | 第77-78页 |
| 2.2.2 SC2-1的核磁共振分析 | 第78-80页 |
| 3 本章小结 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-88页 |
| 致谢 | 第88页 |