| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-26页 |
| 1.1 植物细胞内ROS的产生以及影响 | 第10-13页 |
| 1.1.1 ROS在植物细胞中的来源 | 第11-12页 |
| 1.1.2 ROS在植物逆境响应中的作用 | 第12页 |
| 1.1.3 ROS在植物中的信号途径 | 第12-13页 |
| 1.2 油菜素内酯（BR）的研究进展 | 第13-21页 |
| 1.2.1 BR生理功能的研究 | 第14-16页 |
| 1.2.2 BR信号转导的研究 | 第16-17页 |
| 1.2.3 BR生物合成的研究 | 第17-20页 |
| 1.2.4 BR与其他激素之间关系的研究 | 第20页 |
| 1.2.5 BR应用的研究 | 第20-21页 |
| 1.3 植物丝氨酸羧肽酶的研究 | 第21-22页 |
| 1.4 BR与BRS1关系的研究 | 第22-24页 |
| 1.4.1 BRS1的发现 | 第22-23页 |
| 1.4.2 BRS1表达分析与组织分布 | 第23-24页 |
| 1.4.3 BRS1的生化特性分析 | 第24页 |
| 1.5 研究的目的与意义 | 第24-26页 |
| 第二章 材料与方法 | 第26-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第26页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第26页 |
| 2.1.2 flg22和DAB | 第26页 |
| 2.1.3 菌株和质粒 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-32页 |
| 2.2.1 植物材料的种植、培养及管理 | 第26-27页 |
| 2.2.2 突变体的筛选和鉴定 | 第27-28页 |
| 2.2.3 引物序列 | 第28-29页 |
| 2.2.4 拟南芥总DNA的提取 | 第29页 |
| 2.2.5 拟南芥总RNA的提取及反转录 | 第29-30页 |
| 2.2.6 real-time PCR分析 | 第30页 |
| 2.2.7 western blotting检测 | 第30页 |
| 2.2.8 扫描电子显微镜扫描观察 | 第30页 |
| 2.2.9 GUS染色 | 第30-31页 |
| 2.2.10 Aniline Blue染色 | 第31页 |
| 2.2.11 DAB染色 | 第31-32页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第32-51页 |
| 3.1 BRS1可以部分恢复BR突变体的表型 | 第32-36页 |
| 3.1.1 BRS1可以部分恢复BR信号转导突变体的表型 | 第32-33页 |
| 3.1.2 BRS1可以部分恢复BR生物合成突变体的表型 | 第33-36页 |
| 3.1.3 BRS1在bak1-4 和Ws-2 中的超表达都没有表现出明显表型差异 | 第36页 |
| 3.2 BRS1受BR调控 | 第36-38页 |
| 3.2.1 BRS1对BR信号途径的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.2 BR对BRS1的调控依赖BR信号转导 | 第37-38页 |
| 3.3 BRS1在细胞水平功能的表现 | 第38-40页 |
| 3.4 BRS1的组织定位 | 第40-41页 |
| 3.5 BRS1在胁迫响应中的影响 | 第41-45页 |
| 3.5.1 BRS1与H2O2的关系 | 第41-43页 |
| 3.5.2 BR处理影响BRS1对H2O2的调控 | 第43-45页 |
| 3.6 BRS1先天免疫中的作用 | 第45-51页 |
| 3.6.1 BRS1对植物免疫具有积极保护作用 | 第46-47页 |
| 3.6.2 BRS1对免疫响应基因的调控 | 第47-51页 |
| 第四章 结论与展望 | 第51-54页 |
| 4.1 主要结论 | 第51-52页 |
| 4.2 研究展望 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
