| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 主要符号表 | 第9-10页 |
| 第1章 前言 | 第10-18页 |
| 1.1 单板U型场地运动及单板U型场地运动员损伤概述 | 第10-11页 |
| 1.1.1 单板U型场地 | 第10页 |
| 1.1.2 冰雪运动员损伤概述 | 第10-11页 |
| 1.2 肌腱及肌腱损伤概述 | 第11-14页 |
| 1.2.1 肌腱的结构 | 第11页 |
| 1.2.2 肌腱损伤的病理学特征及其发病机制 | 第11-13页 |
| 1.2.3 肌腱损伤的治疗 | 第13-14页 |
| 1.3 间充质干细胞及在损伤中的应用概述 | 第14-16页 |
| 1.3.1 间充质干细胞进展及定位 | 第14页 |
| 1.3.2 期待间充质干细胞研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3.3 牙龈间充质干细胞研究进展 | 第15页 |
| 1.3.4 干细胞治疗肌腱损伤的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.4 实验动物肌腱损伤模型研究进展 | 第16-18页 |
| 第2章 羊脐带间充质干细胞分离培养基生物学特征分析 | 第18-40页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第18页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第18页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第18页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-28页 |
| 2.2.1 主要实验试剂及配制 | 第18-20页 |
| 2.2.2 胎羊脐带间充质干细胞的分离、培养 | 第20页 |
| 2.2.3 细胞的复苏、冻存 | 第20-21页 |
| 2.2.4 UCMSCs的生物学特性鉴定 | 第21-25页 |
| 2.2.5 UCMSCs的多向分化潜能研究 | 第25-28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-38页 |
| 2.3.1 UCMSCs分离培养与形态学分析 | 第28-30页 |
| 2.3.2 UCMSCs的冻存与复苏 | 第30页 |
| 2.3.3 UCMSCs生物学特征鉴定 | 第30-34页 |
| 2.3.4 UCMSCs多向分化潜能研究 | 第34-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-40页 |
| 第3章 牛牙龈间充质干细胞的分离、培养及生物学特征分析 | 第40-58页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第40页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第40页 |
| 3.1.2 实验动物 | 第40页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-48页 |
| 3.2.1 主要实验试剂及配制 | 第40页 |
| 3.2.2 牛牙龈间充质干细胞的分离、培养 | 第40-41页 |
| 3.2.3 细胞的复苏、冻存 | 第41页 |
| 3.2.4 GMSCs的生物学特性鉴定 | 第41-45页 |
| 3.2.5 GMSCs多向分化潜能研究 | 第45-48页 |
| 3.3 结果与分析 | 第48-56页 |
| 3.3.1 GMSCs分离培养与形态学分析 | 第48-49页 |
| 3.3.2 GMSCs的冻存与复苏 | 第49-50页 |
| 3.3.3 GMSCs生物学特征鉴定 | 第50-54页 |
| 3.3.4 GMSCs多向分化潜能研究 | 第54-56页 |
| 3.4 讨论 | 第56-58页 |
| 第4章 胶原酶Ⅰ诱导的小鼠肌腱损伤动物模型的构建 | 第58-64页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第58页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第58页 |
| 4.1.2 实验试剂的制备 | 第58页 |
| 4.2 实验方法 | 第58-60页 |
| 4.2.1 实验设计 | 第58页 |
| 4.2.2 小鼠肌腱损模型制备 | 第58-59页 |
| 4.2.3 CM-Dil细胞示踪试剂标记肌腱干细胞 | 第59页 |
| 4.2.4 细胞移植 | 第59-60页 |
| 4.3 结果与分析 | 第60-62页 |
| 4.3.1 肌腱组织石蜡切片 | 第60页 |
| 4.3.2 细胞移植治疗肌腱损伤及CM-Dil细胞示踪试剂标记肌腱干细胞 | 第60-62页 |
| 4.3.3 血清学分析 | 第62页 |
| 4.4 讨论 | 第62-64页 |
| 第5章 结论 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 附录 | 第71-73页 |
