| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第16-20页 |
| 1.1 胰岛素抵抗简介 | 第16页 |
| 1.2 肠道微生物 | 第16-18页 |
| 1.2.1 肠道微生物概述 | 第16-17页 |
| 1.2.2 肠道微生物与胰岛素抵抗的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3 海带多糖简介 | 第18页 |
| 1.4 本课题的研究内容、意义及创新点 | 第18-20页 |
| 1.4.1 主要研究内容 | 第18页 |
| 1.4.2 拟开展研究工作的创新性 | 第18-19页 |
| 1.4.3 本课题的意义 | 第19-20页 |
| 第二章 材料与方法 | 第20-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.3 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.4 实验方法 | 第22-29页 |
| 2.4.1 海带多糖的提取 | 第22页 |
| 2.4.2 海带多糖LJP61A的分离纯化 | 第22-23页 |
| 2.4.3 动物模型和饮食 | 第23-25页 |
| 2.4.4 灌胃期间各组小鼠指标的检测 | 第25页 |
| 2.4.5 血清相关指标检测 | 第25页 |
| 2.4.6 HE染色 | 第25-26页 |
| 2.4.6.1 组织切片 | 第25页 |
| 2.4.6.2 H&E染色 | 第25-26页 |
| 2.4.7 小鼠组织RNA的提取及RT-q PCR分析 | 第26-27页 |
| 2.4.7.1 组织RNA的提取 | 第26页 |
| 2.4.7.2 RT-qPCR分析 | 第26-27页 |
| 2.4.8 Western blot分析 | 第27-28页 |
| 2.4.8.1 组织总蛋白的提取 | 第27页 |
| 2.4.8.2 western-blotting免疫印迹分析 | 第27-28页 |
| 2.4.9 肠道菌群的测序分析 | 第28页 |
| 2.4.10 数据收集与统计分析 | 第28-29页 |
| 第三章 结果与分析 | 第29-55页 |
| 3.1 海带多糖LJP61A对小鼠体重、肝重及附睾脂肪的影响 | 第29-30页 |
| 3.2 附睾脂肪的HE染色 | 第30页 |
| 3.3 海带多糖LJP61A对小鼠胰岛素抵抗的影响 | 第30-34页 |
| 3.3.1 小鼠胰岛素耐受实验与口服葡萄糖耐受实验 | 第30-32页 |
| 3.3.2 LJP61A对小鼠空腹血糖、空腹胰岛素含量以及胰岛素抵抗指数的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.3 海带多糖LJP61A对小鼠肝脏、脂肪胰岛素抵抗信号通路蛋白表达的影响 | 第33-34页 |
| 3.4 海带多糖LJP61A对小鼠炎症反应的影响 | 第34-43页 |
| 3.4.1 海带多糖LJP61A对小鼠血清炎性因子的影响 | 第34-35页 |
| 3.4.2 海带多糖LJP61A对小鼠肝脏组织中炎性因子的m RNA表达的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.3 海带多糖LJP61A对小鼠脂肪组织中炎性因子的m RNA表达的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.4 海带多糖LJP61A对小鼠肝脏组织中炎性因子信号通路蛋白表达的影响 | 第37-41页 |
| 3.4.5 海带多糖LJP61A对小鼠脂肪组织中炎性因子信号通路蛋白表达的影响 | 第41-43页 |
| 3.5 海带多糖LJP61A对小鼠脂质代谢的影响 | 第43-45页 |
| 3.6 海带多糖LJP61A对小鼠肠道通透性及内毒素血症的影响 | 第45-48页 |
| 3.7 海带多糖LJP61A对小鼠肠道菌群的影响 | 第48-55页 |
| 第四章 讨论 | 第55-59页 |
| 第五章 结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第67-68页 |
