| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-21页 |
| ·吡咯喹啉醌（PQQ）概况 | 第11-13页 |
| ·吡咯喹啉醌的结构与性质 | 第11页 |
| ·PQQ的生物学功能 | 第11-13页 |
| ·PQQ的应用前景 | 第13页 |
| ·PQQ生物合成的研究进展 | 第13-17页 |
| ·PQQ生产菌 | 第14页 |
| ·PQQ的合成基因 | 第14-16页 |
| ·PQQ合成基因簇的分布及性质 | 第16-17页 |
| ·氧化葡萄糖酸杆菌 | 第17-19页 |
| ·氧化葡萄糖糖酸杆菌的生物学特性 | 第17页 |
| ·影响氧化葡萄糖糖酸杆菌产生PQQ的因素 | 第17-18页 |
| ·氧化葡糖杆菌生物合成PQQ的优势 | 第18-19页 |
| ·本课题立题背景和研究内容 | 第19-21页 |
| ·立题背景与意义 | 第19页 |
| ·研究内容和技术路线 | 第19-21页 |
| 第二章 氧化葡萄糖酸杆菌发酵制备PQQ的条件研究 | 第21-33页 |
| ·实验材料 | 第21-23页 |
| ·菌株 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21-22页 |
| ·主要仪器设备 | 第22页 |
| ·培养基 | 第22-23页 |
| ·实验方法 | 第23-26页 |
| ·培养方法 | 第23页 |
| ·生物量的测定 | 第23页 |
| ·吡咯喹啉醌的测定方法 | 第23-24页 |
| ·单因素实验 | 第24-25页 |
| ·正交试验 | 第25-26页 |
| ·发酵条件优化 | 第26页 |
| ·结果与讨论 | 第26-31页 |
| ·单因素实验结果 | 第26-28页 |
| ·正交试验优化结果 | 第28-29页 |
| ·发酵条件的优化结果 | 第29-31页 |
| ·小结 | 第31-33页 |
| 第三章 氧化葡萄糖酸杆菌发酵液中PQQ的分离纯化研究 | 第33-45页 |
| ·材料 | 第33-35页 |
| ·菌种 | 第33页 |
| ·主要培养基 | 第33页 |
| ·主要试剂 | 第33-34页 |
| ·主要仪器 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-39页 |
| ·氧化葡糖杆菌上清液的制备 | 第35-36页 |
| ·PQQ的提取纯化 | 第36-38页 |
| ·产物的检测分析 | 第38-39页 |
| ·结果与分析 | 第39-43页 |
| ·利用氧化葡萄糖杆菌制备吡咯喹啉醌 | 第39-41页 |
| ·产物的分离纯化 | 第41-43页 |
| ·小结 | 第43-45页 |
| 第四章 吡咯喹啉醌合成基因簇的克隆与表达 | 第45-57页 |
| ·材料 | 第45-47页 |
| ·菌种、质粒与酶 | 第45页 |
| ·试剂与仪器 | 第45-46页 |
| ·主要试剂配制 | 第46-47页 |
| ·培养基 | 第47页 |
| ·方法 | 第47-53页 |
| ·pqqABCDEF基因片段的克隆 | 第47-50页 |
| ·PqqBCDEF蛋白的表达与纯化 | 第50-53页 |
| ·结果与讨论 | 第53-56页 |
| ·基因pqqA-F的克隆 | 第53-55页 |
| ·蛋白PqqBCDEF的表达与纯化 | 第55-56页 |
| ·小结 | 第56-57页 |
| 第五章 无细胞体系中吡咯喹啉醌的酶法合成研究 | 第57-63页 |
| ·材料 | 第57-59页 |
| ·菌种 | 第57页 |
| ·培养基 | 第57页 |
| ·试剂 | 第57-58页 |
| ·主要仪器与设备 | 第58页 |
| ·主要试剂配制 | 第58-59页 |
| ·方法 | 第59-60页 |
| ·氧化葡糖杆菌的培养 | 第59页 |
| ·体外反应试验 | 第59-60页 |
| ·结果与讨论 | 第60-62页 |
| ·PqqA与G.oxy上清反应试验 | 第60-62页 |
| ·PqqA多肽室温下CD测试 | 第62页 |
| ·小结 | 第62-63页 |
| 第六章 结论与展望 | 第63-65页 |
| ·结论 | 第63页 |
| ·展望 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 附录 | 第75页 |