| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第1章 前言 | 第11-17页 |
| ·甜菜 M14 品系的来源及研究进展 | 第11-12页 |
| ·甜菜 M14 品系来源 | 第11页 |
| ·甜菜 M14 品系研究进展 | 第11-12页 |
| ·S-腺苷甲硫氨酸合成酶功能研究进展 | 第12-13页 |
| ·盐胁迫、氧化胁迫对植物生长的影响 | 第13-14页 |
| ·盐胁迫对植物生长的影响 | 第13-14页 |
| ·氧化胁迫对植物生长的影响 | 第14页 |
| ·基因敲除型拟南芥突变株的应用 | 第14-15页 |
| ·试验研究目的及意义 | 第15-16页 |
| ·试验技术路线 | 第16-17页 |
| 第2章 材料与方法 | 第17-34页 |
| ·试验材料 | 第17-19页 |
| ·植物材料 | 第17页 |
| ·菌株及质粒载体 | 第17页 |
| ·试剂及试剂盒 | 第17页 |
| ·试验所需常用溶液、试剂及培养基的配制 | 第17-18页 |
| ·试验所需引物 | 第18-19页 |
| ·试验方法 | 第19-34页 |
| ·BvM14-SAMS2 基因 cDNA 全长的获得 | 第19-21页 |
| ·甜菜 M14 品系 BvM14-SAMS2 基因的表达模式分析 | 第21-23页 |
| ·BvM14-SAMS2 基因原核表达体系的研究 | 第23-27页 |
| ·BvM14-SAMS2 基因在拟南芥中的表达及功能鉴定 | 第27-34页 |
| 第3章 结果与分析 | 第34-71页 |
| ·甜菜 M14 品系 BvM14-SAMS2 基因 cDNA 全长的获得 | 第34-36页 |
| ·500mM NaCl 胁迫下甜菜 M14 品系叶片总 RNA 的提取 | 第34页 |
| ·甜菜 M14 品系 BvM14-SAMS2 基因 3′末端的获得 | 第34-35页 |
| ·甜菜 M14 品系 BvM14-SAMS2 基因 5′末端的获得 | 第35-36页 |
| ·BvM14-SAMS2 基因 cDNA 全长的 RT-PCR 验证 | 第36页 |
| ·甜菜 M14 品系 BvM14-SAMS2 基因的生物信息学分析 | 第36-40页 |
| ·BvM14-SAMS2 基因 cDNA 全长的序列分析 | 第36-38页 |
| ·BvM14-SAMS2 蛋白多重序列比对 | 第38-39页 |
| ·BvM14-SAMS2 蛋白的系统发育分析 | 第39-40页 |
| ·甜菜 M14 品系 BvM14-SAMS2 基因的表达模式分析 | 第40-44页 |
| ·BvM14-SAMS2 基因在甜菜 M14 中的组织特异性表达分析 | 第40-41页 |
| ·盐胁迫下 BvM14-SAMS2 基因在甜菜 M14 品系根和叶片中的表达模式分析 | 第41-44页 |
| ·BvM14-SAMS2 基因原核表达体系的研究 | 第44-49页 |
| ·原核表达载体 pET28a-BvM14-SAMS2 的构建 | 第44-46页 |
| ·BvM14-SAMS2 蛋白的原核诱导表达 | 第46-47页 |
| ·BvM14-SAMS2 蛋白的 Western 印迹鉴定 | 第47-48页 |
| ·BvM14-SAMS2 蛋白的纯化及酶活力的测定 | 第48-49页 |
| ·BvM14-SAMS2 基因在拟南芥中的表达及功能鉴定 | 第49-71页 |
| ·植物表达载体 pCAMBIA1305.1-BvM14-SAMS2 的构建 | 第49-51页 |
| ·植物表达载体 pCAMBIA1305.1-BvM14-SAMS2 转入农杆菌 | 第51-52页 |
| ·拟南芥突变株纯合体的鉴定 | 第52-53页 |
| ·T_0代阳性转基因植株的获得与筛选 | 第53-55页 |
| ·T_1代阳性转基因植株的抗性鉴定 | 第55-71页 |
| 第4章 讨论 | 第71-74页 |
| ·甜菜 M14 品系 BvM14-SAMS2 基因的表达模式分析 | 第71-72页 |
| ·BvM14-SAMS2 序列差异氨基酸对植物抵御盐、氧化胁迫的调节作用 | 第72页 |
| ·下一步工作思路 | 第72-74页 |
| 第5章 结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-80页 |
| 附录 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第82页 |
