摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-11页 |
英文缩略表 | 第11-12页 |
第一章 引言 | 第12-21页 |
·植物对非生物逆境的响应 | 第12-14页 |
·受非生物逆境诱导基因 | 第12页 |
·ABA 与非生物逆境 | 第12页 |
·ROS 与非生物逆境 | 第12-13页 |
·非生物逆境诱导基因表达的 ABA 依赖性途径与非 ABA 依赖性途径 | 第13-14页 |
·ABA 信号通路 | 第14-16页 |
·ABA 受体研究 | 第14-15页 |
·bZIP 家族转录因子在 ABA 信号传导中的作用 | 第15页 |
·ABI5 的调控 | 第15-16页 |
·NINJA 家族蛋白和 TOPLESS 家族蛋白 | 第16-19页 |
·TOPLESS 家族蛋白 | 第16-18页 |
·NINJA 家族蛋白 | 第18-19页 |
·植物原生质体瞬时表达的研究 | 第19页 |
·原生质体瞬时表达的特点 | 第19页 |
·原生质体瞬时的应用 | 第19页 |
·本研究的背景、意义和目的 | 第19-20页 |
·本研究的内容和实验方案 | 第20-21页 |
第二章 ABP9 与 NCP1 分段瞬时表达载体的构建 | 第21-27页 |
·材料与试剂 | 第21页 |
·菌株及载体 | 第21页 |
·酶和试剂 | 第21页 |
·引物合成及测序 | 第21页 |
·方法 | 第21-25页 |
·构建策略 | 第21-22页 |
·大肠杆菌的接种与保存 | 第22-23页 |
·质粒的小量提取 | 第23页 |
·ABP9 与 NCP1 各个片段的 PCR 扩增 | 第23-25页 |
·酶切反应与 DNA 凝胶回收 | 第25页 |
·连接与转化 | 第25页 |
·实验结果 | 第25-26页 |
·重组子鉴定 | 第25-26页 |
·结论与讨论 | 第26-27页 |
第三章 玉米原生质体瞬时表达体系的优化及 ABP9 与 NCP1 各片段的表达 | 第27-36页 |
·材料与试剂 | 第27页 |
·植物材料 | 第27页 |
·质粒载体 | 第27页 |
·玉米种植条件 | 第27页 |
·超速离心机 | 第27页 |
·荧光显微镜 | 第27页 |
·Western 显色系统 | 第27页 |
·抗体与试剂 | 第27页 |
·方法 | 第27-32页 |
·CsCl 超速离心大提质粒法 | 第27-28页 |
·原生质体转化方法 | 第28-30页 |
·Western blot | 第30-32页 |
·实验结果 | 第32-35页 |
·光照条件对玉米原生质体转化的影响 | 第32-33页 |
·Western blot 检测 ABP9 和 NCP1 全长及分段载体在玉米原生质体中表达 | 第33-34页 |
·NCP1 对 ABP9 蛋白质积累量的影响 | 第34-35页 |
·结论与讨论 | 第35-36页 |
第四章 ABP9 与 NCP1 的互作区段的确定与互作保守位点的预测 | 第36-42页 |
·实验材料与试剂 | 第36页 |
·材料 | 第36页 |
·试剂 | 第36页 |
·实验方法 | 第36-37页 |
·免疫共沉淀 | 第36-37页 |
·预测 ABP9 与 NCP1 互作区段的保守位点 | 第37页 |
·试验结果 | 第37-41页 |
·ABP9 全长与 NCP1 各片段的互作 | 第37-39页 |
·NCP1 全长与 ABP9 各片段的互作 | 第39-40页 |
·预测 ABP9 与 NCP1 互作区段的保守位点 | 第40-41页 |
·结论与讨论 | 第41-42页 |
第五章 ABP9 和 NCP1 互作位点的验证 | 第42-46页 |
·实验方法 | 第42-43页 |
·ABP9 互作位点删除基因 ABP9 (151-169aa) 的瞬时表达载体的构建 | 第42-43页 |
·NCP1 互作位点删除基因 NCP1 (213-262aa)瞬时表达载体的构建 | 第43页 |
·实验结果 | 第43-45页 |
·pUC-ABP9 (151-169aa)-3flag 的构建 | 第43-44页 |
·pUC-NCP1 (213-262aa)-HA 的构建 | 第44页 |
·CoIP 验证 ABP9 与 NCP1 互作的保守位点 | 第44-45页 |
·结论与讨论 | 第45-46页 |
第六章 结论与讨论 | 第46-48页 |
参考文献 | 第48-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
作者简历 | 第56页 |