| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 1 绪论 | 第10-17页 |
| ·壳聚糖的研究概述 | 第10-14页 |
| ·医疗方面应用 | 第10页 |
| ·壳聚糖基载体转染的通道及影响因素 | 第10-13页 |
| ·修饰改性壳聚糖基载体 | 第13-14页 |
| ·叶酸及靶向叶酸受体的研究概述 | 第14-16页 |
| ·叶酸的性质 | 第14-15页 |
| ·叶酸治病的机理 | 第15页 |
| ·叶酸为靶向分子的相关研究 | 第15-16页 |
| ·课题研究意义和展望 | 第16-17页 |
| ·课题研究的意义 | 第16页 |
| ·展望 | 第16-17页 |
| 2 叶酸偶联壳聚糖纳米粒的合成及性质鉴定 | 第17-28页 |
| ·材料与仪器 | 第17-19页 |
| ·仪器 | 第17页 |
| ·试剂 | 第17-18页 |
| ·常用试剂配制 | 第18-19页 |
| ·试验方法 | 第19-22页 |
| ·壳聚糖的纯化 | 第19-20页 |
| ·叶酸偶联壳聚糖的合成及纯化 | 第20-21页 |
| ·叶酸偶联壳聚糖表征及偶联率测定 | 第21页 |
| ·叶酸偶联壳聚糖纳米粒制备 | 第21-22页 |
| ·结果与讨论 | 第22-27页 |
| ·本章小结 | 第27-28页 |
| 3 叶酸偶联壳聚糖小干扰RNA纳米粒制备及性质检测 | 第28-38页 |
| ·材料与试剂 | 第28-29页 |
| ·仪器 | 第28页 |
| ·试剂 | 第28页 |
| ·常用试剂配置 | 第28-29页 |
| ·试验方法 | 第29-31页 |
| ·FA-CTS-siRNA纳米粒制备 | 第29-31页 |
| ·FA-CTS-siRNA纳米粒径测定 | 第31页 |
| ·纳米粒酶保护实验 | 第31页 |
| ·纳米粒载药量和体外释放测定 | 第31页 |
| ·结果与讨论 | 第31-37页 |
| ·本章小结 | 第37-38页 |
| 4 叶酸偶联壳聚糖小干扰RNA纳米粒对MCF-7转染条件的筛选 | 第38-43页 |
| ·材料与仪器 | 第38-39页 |
| ·仪器 | 第38页 |
| ·试剂 | 第38页 |
| ·常用试剂配制 | 第38-39页 |
| ·试验方法 | 第39-40页 |
| ·荧光显微镜观察GFP标记FA-CTS-siRNA纳米粒转染MCF-7细胞 | 第39-40页 |
| ·MTT对FA-CTS-siRNA纳米粒转染条件的筛选 | 第40页 |
| ·结果与讨论 | 第40-42页 |
| ·本章小结 | 第42-43页 |
| 5 叶酸偶联壳聚糖小干扰RNA纳米粒对MCF-7细胞生长抑制作用 | 第43-57页 |
| ·材料与仪器 | 第43-45页 |
| ·仪器 | 第43页 |
| ·试剂 | 第43页 |
| ·常用试剂配置 | 第43-45页 |
| · | 第45-54页 |
| ·MTT法检测FA-CTS-siRNA对MCF-7细胞的抑制率 | 第45-46页 |
| ·ELISA检测对MCF-7细胞上清VEGF蛋白的表达情况 | 第46-47页 |
| ·Western blot检测对VEGF蛋白表达的抑制 | 第47-50页 |
| ·RT-PCR检测对VEGF基因表达的抑制 | 第50-53页 |
| ·Annexin V-FITC/PI双染色检测对MCF-7细胞促凋亡作用 | 第53-54页 |
| ·结果与讨论 | 第54-56页 |
| ·本章小结 | 第56-57页 |
| 6 结论与展望 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
