钝顶螺旋藻藻种选育及有效成分提取的研究
| 独创性声明 | 第1-3页 |
| 中文摘要 | 第3-4页 |
| 英文摘要 | 第4-9页 |
| 引言 | 第9-27页 |
| 1 螺旋藻的发现和前期研究概况 | 第9-11页 |
| 2 螺旋藻的生物学、生理学特性 | 第11-12页 |
| ·螺旋藻的形态 | 第11页 |
| ·螺旋藻的光合作用 | 第11页 |
| ·螺旋藻的生活周期 | 第11-12页 |
| ·温度、光照对螺旋藻生长的影响 | 第12页 |
| ·光质对螺旋藻生长的影响 | 第12页 |
| 3 螺旋藻的实验室培养 | 第12-14页 |
| ·光合自养生长的培养 | 第12-13页 |
| ·混合营养生长的培养 | 第13-14页 |
| 4 螺旋藻的诱变育种 | 第14-17页 |
| ·物理诱变 | 第14-15页 |
| ·化学诱变 | 第15页 |
| ·单细胞或单藻丝的制备 | 第15-17页 |
| 5 螺旋藻中的营养成分 | 第17-24页 |
| ·螺旋藻蛋白质 | 第17-19页 |
| ·螺旋藻多糖 | 第19-21页 |
| ·螺旋藻类脂 | 第21-23页 |
| ·螺旋藻色素 | 第23-24页 |
| ·螺旋藻的其它用途 | 第24页 |
| 6 螺旋藻的开发利用及未来展望 | 第24-27页 |
| 实验材料与方法 | 第27-32页 |
| 1 实验材料 | 第27-28页 |
| 2 实验方法 | 第28-32页 |
| ·钝顶螺旋藻藻种选育 | 第28-30页 |
| ·He-Ne激光诱变 | 第28页 |
| ·优势藻种的筛选 | 第28-29页 |
| ·优势藻种生长速度的测定 | 第29页 |
| ·β—胡萝卜素、蛋白质、多糖含量的测定 | 第29页 |
| ·叶绿素a紫外吸收光谱扫描 | 第29页 |
| ·类胡萝卜素紫外吸收光谱扫描 | 第29页 |
| ·过氧化氢酶活性测定 | 第29页 |
| ·突变株发酵条件的优化 | 第29-30页 |
| ·突变株传代稳定性分析 | 第30页 |
| ·螺旋藻蛋白质最佳提取条件的确定 | 第30-31页 |
| ·β—胡萝卜素的提取方法的研究 | 第31-32页 |
| 实验结果及讨论 | 第32-55页 |
| 1 钝顶螺旋藻藻种选育 | 第32-45页 |
| ·He-Ne激光对藻丝形态的影响 | 第32页 |
| ·He-Ne激光对藻生长速度的影响 | 第32-33页 |
| ·出发株和突变株的生长曲线 | 第32-33页 |
| ·出发株和突变株的比生长速率与时间的关系 | 第33页 |
| ·He-Ne激光照射引起钝顶螺旋藻中各成分的变化 | 第33-44页 |
| ·出发株与突变株β—胡萝卜素含量的比较 | 第34-35页 |
| ·出发株与突变株蛋白含量的比较 | 第35-36页 |
| ·出发株与突变株多糖含量的比较 | 第36-38页 |
| ·叶绿素a的吸收光谱 | 第38页 |
| ·类胡萝卜素的紫外吸收光谱 | 第38-39页 |
| ·过氧化氢酶活性测定 | 第39-40页 |
| ·突变株发酵条件的优化 | 第40-44页 |
| ·培养条件的优化 | 第40-41页 |
| ·不同氮源的筛选 | 第41-44页 |
| ·突变株传代稳定性分析 | 第44-45页 |
| 2 螺旋藻蛋白质最佳提取条件的确定 | 第45-48页 |
| ·螺旋藻蛋白质最佳提取条件的确定 | 第45-47页 |
| ·提取温度对蛋白质提取效果的影响 | 第47页 |
| ·pH值对蛋白质溶解度的影响 | 第47页 |
| ·提取液的浓度对蛋白质溶解度的影响 | 第47页 |
| ·提取时间对蛋白质提取效果的影响 | 第47-48页 |
| 3 β—胡萝卜素提取方法的研究 | 第48-52页 |
| ·β—胡萝卜素粗品的获得 | 第48页 |
| ·单一有机溶剂的提取结果 | 第48-49页 |
| ·混合有机溶剂的抽提结果 | 第49-51页 |
| ·丙酮-甲醇棍合有机溶剂 | 第49-50页 |
| ·氯仿-甲醇混合有机溶剂 | 第50页 |
| ·氯仿-丙酮混合有机溶剂 | 第50-51页 |
| ·提取试剂的确定 | 第51-52页 |
| ·β—胡萝卜素纯品的获得 | 第51页 |
| ·纯品与标准品的比较 | 第51-52页 |
| 4 结论与问题 | 第52-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 版图 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
