| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 英文缩写略表 | 第14-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-27页 |
| 1 多糖的研究概述 | 第15-22页 |
| ·生物活性研究 | 第15-18页 |
| ·多糖免疫调节作用 | 第15-16页 |
| ·多糖抗氧化作用 | 第16-18页 |
| ·多糖分离纯化和结构鉴定方法 | 第18-19页 |
| ·多糖的提取 | 第18页 |
| ·多糖的除杂 | 第18-19页 |
| ·多糖的纯化和纯度检查 | 第19页 |
| ·多糖的结构分析 | 第19页 |
| ·多糖的构效关系 | 第19-21页 |
| ·单糖的组成和糖苷键类型 | 第20页 |
| ·支链的分支度与长度 | 第20页 |
| ·分子量 | 第20页 |
| ·高级结构 | 第20-21页 |
| ·理化性质 | 第21页 |
| ·多糖研究中存在的问题 | 第21-22页 |
| 2 苦瓜及苦瓜多糖的概述 | 第22-25页 |
| ·苦瓜活性成分的研究 | 第22-23页 |
| ·苦瓜皂甙 | 第22页 |
| ·苦瓜素 | 第22页 |
| ·苦瓜蛋白及多肽 | 第22-23页 |
| ·苦瓜多糖 | 第23页 |
| ·苦瓜多糖的研究进展 | 第23-25页 |
| ·苦瓜多糖的提取 | 第23页 |
| ·苦瓜多糖的纯化和结构分析 | 第23-24页 |
| ·苦瓜多糖的功能活性研究 | 第24-25页 |
| 3 立题背景、研究意义和主要研究内容 | 第25-27页 |
| ·立题背景和研究意义 | 第25页 |
| ·主要研究内容与技术路线 | 第25-27页 |
| ·主要研究内容 | 第25-26页 |
| ·技术路线 | 第26-27页 |
| 第二章 苦瓜多糖的纤维素酶-超声波辅助提取工艺优化 | 第27-38页 |
| 1 材料与方法 | 第27-30页 |
| ·材料与试剂 | 第27页 |
| ·主要仪器 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-30页 |
| ·苦瓜多糖的提取工艺流程 | 第28页 |
| ·苦瓜多糖含量的测定 | 第28页 |
| ·苦瓜多糖提取的单因素试验 | 第28-29页 |
| ·苦瓜多糖提取的多因素响应面设计试验 | 第29-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-37页 |
| ·苦瓜多糖提取单因素试验结果 | 第30-33页 |
| ·超声功率 | 第30页 |
| ·纤维素酶量 | 第30-31页 |
| ·液料比 | 第31页 |
| ·提取时间 | 第31-32页 |
| ·pH | 第32页 |
| ·提取温度 | 第32-33页 |
| ·苦瓜多糖提取工艺条件优化 | 第33-37页 |
| ·多糖提取率模型的建立与检验 | 第33-35页 |
| ·试验因子间交互效应分析 | 第35-36页 |
| ·提取条件的优化及验证 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37页 |
| 4 结论 | 第37-38页 |
| 第三章 苦瓜多糖的免疫调节作用 | 第38-49页 |
| 1 材料与仪器 | 第38-39页 |
| ·材料与试剂 | 第38-39页 |
| ·主要仪器 | 第39页 |
| 2 方法 | 第39-42页 |
| ·MCP体外免疫活性评价实验 | 第39-40页 |
| ·MCP样品溶液的配制 | 第39页 |
| ·MCP对体外培养小鼠脾淋巴细胞增殖的促进作用 | 第39-40页 |
| ·MCP对免疫低下小鼠体内免疫调节实验 | 第40-42页 |
| ·动物处理与分组 | 第40页 |
| ·碳廓清实验 | 第40-41页 |
| ·血清溶血素实验 | 第41页 |
| ·NK细胞实验 | 第41-42页 |
| ·脾淋巴细胞转化实验 | 第42页 |
| ·免疫器官指数测定 | 第42页 |
| ·统计分析 | 第42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-46页 |
| ·MCP体外刺激脾淋巴细胞增值效果 | 第42-44页 |
| ·MCP直接直接刺激小鼠脾淋巴细胞增殖效果 | 第43-44页 |
| ·MCP协同ConA刺激小鼠脾淋巴细胞增殖效果 | 第44页 |
| ·体内免疫结果与分析 | 第44-46页 |
| ·碳廓清指数 | 第44-45页 |
| ·血清溶血素抗体含量 | 第45页 |
| ·NK细胞活性 | 第45页 |
| ·脾淋巴细胞转化 | 第45-46页 |
| ·免疫器官指数测定 | 第46页 |
| 4 讨论 | 第46-48页 |
| 5 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 苦瓜多糖的抗氧化作用 | 第49-64页 |
| 1 材料与仪器 | 第49-50页 |
| ·材料与试剂 | 第49-50页 |
| ·主要仪器 | 第50页 |
| 2 方法 | 第50-55页 |
| ·MCP体外抗氧化活性评价实验 | 第50-52页 |
| ·苦瓜多糖待测液的配制 | 第50页 |
| ·DPPH自由基清除率的测定 | 第50-51页 |
| ·ABTS自由基清除率的测定 | 第51页 |
| ·铁离子还原测定法(FRAP) | 第51-52页 |
| ·MCP对免疫低下小鼠体内抗氧化的作用 | 第52-54页 |
| ·动物样品的制备 | 第52-53页 |
| ·MCP对免疫抑制小鼠免疫器官自由基产生酶活性的测定 | 第53-54页 |
| ·MCP对免疫抑制小鼠体内自由基清除能力的测定 | 第54页 |
| ·统计分析 | 第54-55页 |
| 3 结果与分析 | 第55-60页 |
| ·MCP体外抗氧化活性 | 第55-57页 |
| ·对DPPH自由基的清除作用 | 第55-56页 |
| ·对ABTS自由基的清除作用 | 第56页 |
| ·对Fe~(3+)的还原能力 | 第56-57页 |
| ·体内抗氧化结果与分析 | 第57-60页 |
| ·MCP对免疫抑制小鼠免疫器官自由基产生酶活性的影响 | 第57-58页 |
| ·MCP对免疫抑制小鼠体内自由基的清除作用 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-62页 |
| 5 结论 | 第62-64页 |
| 第五章 苦瓜多糖的纯化和活性成分分析 | 第64-82页 |
| 1 材料与仪器 | 第64-65页 |
| ·材料与试剂 | 第64-65页 |
| ·主要仪器 | 第65页 |
| 2 方法 | 第65-68页 |
| ·MCP纯化工艺流程 | 第65页 |
| ·MCP脱蛋白和透析 | 第65-66页 |
| ·MCP的DEAE-52纤维柱层析纯化 | 第66-67页 |
| ·DEAE-52的预处理 | 第66页 |
| ·上样 | 第66页 |
| ·洗脱及收集 | 第66页 |
| ·离子交换纤维素的再生与保存 | 第66-67页 |
| ·MCP活性成分的筛选 | 第67页 |
| ·MCP各级分对ABTS自由基的清除率的测定 | 第67页 |
| ·MCP各极分对体外脾淋巴细胞增殖的影响 | 第67页 |
| ·MCP活性组分的结构分析 | 第67-68页 |
| ·MCP活性组分分子量的测定 | 第67页 |
| ·MCP活性组分的GC-MS分析 | 第67-68页 |
| ·MCP活性组分的紫外可见光谱鉴定方法 | 第68页 |
| ·MCP活性组分的红外光谱鉴定方法 | 第68页 |
| ·统计方法 | 第68页 |
| 3 结果分析 | 第68-79页 |
| ·MCP经DEAE-52纤维柱层析的纯化结果 | 第68-72页 |
| ·MCP的0.025mol/L NaCl洗脱曲线 | 第69页 |
| ·MCP的0.05mol/L NaCl洗脱曲线 | 第69-70页 |
| ·MCP的0.1mol/L NaCl洗脱曲线 | 第70页 |
| ·MCP的0.3mol/L NaCl洗脱曲线 | 第70-71页 |
| ·MCP的0.5mol/L NaOH洗脱曲线 | 第71页 |
| ·MCP各级分的含量和比值 | 第71-72页 |
| ·MCP活性成分的筛选 | 第72-74页 |
| ·MCP各级分对ABTS自由基的清除率 | 第72页 |
| ·MCP各级分对体外脾淋巴细胞增殖的影响 | 第72-73页 |
| ·MCP各级分活性的比较结果 | 第73-74页 |
| ·MCP活性组分的结构分析 | 第74-79页 |
| ·MCP3、MCP6分子量的测定 | 第74-75页 |
| ·MCP3、MCP6的GC-MS分析 | 第75-77页 |
| ·MCP3、MCP6的紫外光谱分析 | 第77-78页 |
| ·MCP3、MCP6的红外光谱分析 | 第78-79页 |
| 4 讨论 | 第79-81页 |
| 5 结论 | 第81-82页 |
| 结果与展望 | 第82-84页 |
| 1 论文主要结论 | 第82-83页 |
| 2 本研究的创新点 | 第83页 |
| 3 前景与展望 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
