| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-10页 |
| 第一章 前言 | 第15-23页 |
| 1.1 癌症的概述 | 第15页 |
| 1.2 食管癌的流行病学现状及治疗方法 | 第15-17页 |
| 1.3 细胞凋亡 | 第17-21页 |
| 1.3.1 Caspase家族与细胞凋亡 | 第17-18页 |
| 1.3.2 Bcl-2家族与细胞凋亡 | 第18-19页 |
| 1.3.3 MAPK家族与细胞凋亡 | 第19-21页 |
| 1.4 紫草素、阿卡宁及其衍生物的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第22-23页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第23-41页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第23-29页 |
| 2.1.1 主要仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2.1.2 耗材与试剂 | 第24-27页 |
| 2.1.3 抗体 | 第27-28页 |
| 2.1.4 细胞株 | 第28页 |
| 2.1.5 药物 | 第28-29页 |
| 2.2 主要试剂的配制 | 第29-31页 |
| 2.2.1 药物溶液的配制 | 第29页 |
| 2.2.2 细胞培养中试剂的配制 | 第29页 |
| 2.2.3 MTT溶液的配制 | 第29-30页 |
| 2.2.4 结晶紫染色液的配制 | 第30页 |
| 2.2.5 Westernblot检测中试剂的配制 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-41页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第31-32页 |
| 2.3.2 MTT法检测β-AIVS对食管癌细胞增殖的抑制作用 | 第32-33页 |
| 2.3.3 细胞集落形成实验 | 第33页 |
| 2.3.4 细胞划痕实验 | 第33页 |
| 2.3.5 PI单染法检测细胞周期 | 第33-34页 |
| 2.3.6 细胞形态学的观察 | 第34页 |
| 2.3.7 AnnexinⅤ-FITC/PI双染法检测细胞凋亡 | 第34-35页 |
| 2.3.8 JC-1染色法检测线粒体膜电位 | 第35-36页 |
| 2.3.9 DCFH-DA荧光探针法检测细胞内ROS水平 | 第36页 |
| 2.3.10 抑制剂NAC/Z-VAD-FMK/STF-083010对β-AIVS促凋亡作用的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.11 Westernblot检测 | 第37-40页 |
| 2.3.12 统计学分析 | 第40-41页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第41-60页 |
| 3.1 β-AIVS抑制食管癌细胞的增殖 | 第41-43页 |
| 3.2 β-AIVS抑制食管癌细胞的集落形成 | 第43-44页 |
| 3.3 β-AIVS抑制食管癌细胞的迁移 | 第44-45页 |
| 3.4 β-AIVS不干扰细胞周期的进程 | 第45-46页 |
| 3.5 β-AIVS对细胞形态学的影响 | 第46-48页 |
| 3.6 β-AIVS促进食管癌细胞发生凋亡 | 第48-49页 |
| 3.7 β-AIVS降低线粒体膜电位 | 第49-50页 |
| 3.8 β-AIVS促进细胞内ROS水平的提高 | 第50-52页 |
| 3.9 清除ROS逆转β-AIVS对细胞凋亡的促进作用 | 第52-53页 |
| 3.10 β-AIVS通过Caspase依赖途径激活细胞凋亡 | 第53-55页 |
| 3.11 β-AIVS对细胞的促凋亡作用不依赖于内质网途径 | 第55-56页 |
| 3.12 β-AIVS对食管癌细胞促凋亡作用的机制研究 | 第56-60页 |
| 3.12.1 β-AIVS对Caspase家族蛋白表达的影响 | 第56-57页 |
| 3.12.2 β-AIVS对Bcl-2家族蛋白表达的影响 | 第57-58页 |
| 3.12.3 β-AIVS对MAPK家族蛋白表达的影响 | 第58-60页 |
| 第四章 讨论与总结 | 第60-65页 |
| 4.1 讨论 | 第60-64页 |
| 4.2 总结 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第71页 |
