| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-29页 |
| 1.1 脂肪酶概述 | 第14-19页 |
| 1.1.1 脂肪酶的分布、生产方法 | 第14页 |
| 1.1.2 脂肪酶的结构、催化机理及常见反应 | 第14-17页 |
| 1.1.3 脂肪酶的应用 | 第17-19页 |
| 1.2 纤维素纳米晶 | 第19-20页 |
| 1.2.1 纤维素纳米晶的概述 | 第19页 |
| 1.2.2 纤维素纳米晶的制备 | 第19-20页 |
| 1.2.3 纤维素纳米晶作为酶载体的应用 | 第20页 |
| 1.3 酶的固定化 | 第20-22页 |
| 1.3.1 固定化酶的概述 | 第20-21页 |
| 1.3.2 固定化酶的方法 | 第21-22页 |
| 1.4 手性药物概述 | 第22-25页 |
| 1.4.1 手性的普遍性和重要性 | 第22-23页 |
| 1.4.2 手性药物的兴起和发展 | 第23页 |
| 1.4.3 对映体纯手性药物的制备方法 | 第23-25页 |
| 1.5 酶促对映体纯酮基布洛芬的研究进展 | 第25-27页 |
| 1.5.1 1 有机相中酶促酮基布洛芬选择性酯化反应 | 第26-27页 |
| 1.5.2 2 水相中酶促酮基布洛芬选择性水解反应 | 第27页 |
| 1.6 本课题的研究意义与主要内容 | 第27-29页 |
| 第二章 磁性纤维素纳米晶MCNC固定化脂肪酶的制备 | 第29-38页 |
| 2.1 引言 | 第29-30页 |
| 2.2 实验材料和设备 | 第30-31页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第30页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-33页 |
| 2.3.1 洋葱假单胞菌脂肪酶PCL粗酶的纯化 | 第31页 |
| 2.3.2 脂肪酶蛋白浓度的测定 | 第31页 |
| 2.3.3 脂肪酶酶活力的测定方法 | 第31页 |
| 2.3.4 磁性纤维素纳米晶固定化脂肪酶的制备 | 第31-32页 |
| 2.3.5 固定化过程中各因素对固定化效果的影响 | 第32-33页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第33-37页 |
| 2.4.1 PCL@MCNC制备中沉降时间的确定 | 第33-34页 |
| 2.4.2 MCNC/PCL质量比的确定 | 第34-35页 |
| 2.4.3 交联剂浓度的确定 | 第35-36页 |
| 2.4.4 交联时间的确定 | 第36-37页 |
| 2.5 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 磁性纤维素纳米晶MCNC固定化脂肪酶的表征 | 第38-56页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 实验材料和设备 | 第38-39页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-41页 |
| 3.3.1 洋葱假单胞菌脂肪酶PCL粗酶的纯化 | 第39页 |
| 3.3.2 脂肪酶蛋白浓度的测定 | 第39页 |
| 3.3.3 脂肪酶酶活力的测定方法 | 第39页 |
| 3.3.4 磁性纤维素纳米晶固定化脂肪酶PCL@MCNC的制备 | 第39页 |
| 3.3.5 PCL@MCNC的结构表征 | 第39-40页 |
| 3.3.6 PCL@MCNC酶学性质的表征 | 第40-41页 |
| 3.3.7 PCL@MCNC动力学参数的研究 | 第41页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第41-54页 |
| 3.4.1 PCL@MCNC的傅立叶红外分析 | 第41-44页 |
| 3.4.2 PCL@MCNC扫描电镜分析 | 第44-45页 |
| 3.4.3 PCL@MCNC原子力显微镜分析 | 第45-47页 |
| 3.4.4 PCL@MCNC最适PH的研究 | 第47-48页 |
| 3.4.5 PCL@MCNC最适温度的研究 | 第48-50页 |
| 3.4.6 PCL@MCNC pH耐受性的研究 | 第50-51页 |
| 3.4.7 PCL@MCNC温度稳定性的研究 | 第51页 |
| 3.4.8 PCL@MCNC有机溶剂耐受性的研究 | 第51-53页 |
| 3.4.9 PCL@MCNC储藏稳定性的研究 | 第53页 |
| 3.4.10 PCL@MCNC动力学参数的研究 | 第53-54页 |
| 3.5 本章小结 | 第54-56页 |
| 第四章 PCL@MCNC催化酮基布洛芬乙酯不对称水解反应的研究 | 第56-69页 |
| 4.1 引言 | 第56-57页 |
| 4.2 实验材料和设备 | 第57页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第57页 |
| 4.2.2 主要仪器设备 | 第57页 |
| 4.3 实验方法 | 第57-60页 |
| 4.3.1 洋葱假单胞菌脂肪酶PCL粗酶的纯化 | 第57页 |
| 4.3.2 脂肪酶蛋白浓度的测定 | 第57页 |
| 4.3.3 脂肪酶酶活力的测定方法 | 第57页 |
| 4.3.4 磁性纤维素纳米晶固定化脂肪酶PCL@MCNC的制备 | 第57页 |
| 4.3.5 酮基布洛芬乙酯的合成 | 第57-58页 |
| 4.3.6 液相色谱(HPLC)分析条件 | 第58页 |
| 4.3.7 反应初速度、最大产率和对映体纯度e.e.的确定 | 第58-59页 |
| 4.3.8 缓冲液PH值对PCL@MCNC催化KE不对称水解反应的影响 | 第59页 |
| 4.3.9 表面活性剂Triton X-100 的含量对PCL@MCNC催化KE不对称水解反应的影响 | 第59页 |
| 4.3.10 底物浓度对PCL@MCNC催化KE不对称水解反应的影响 | 第59-60页 |
| 4.3.11 温度对PCL@MCNC催化KE不对称水解反应的影响 | 第60页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第60-67页 |
| 4.4.1 缓冲液PH值对PCL和PCL@MCNC催化KE不对称水解反应的影响 | 第60-62页 |
| 4.4.2 表面活性剂Triton X-100 的含量对PCL和PCL@MCNC催化KE不对称水解反应的影响 | 第62-63页 |
| 4.4.3 底物浓度对PCL和PCL@MCNC催化KE不对称水解反应的影响 | 第63-65页 |
| 4.4.4 温度对PCL和PCL@MCNC催化KE不对称水解反应的影响 | 第65-67页 |
| 4.5 本章小结 | 第67-69页 |
| 结论与展望 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-82页 |
| 附录 | 第82-83页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 附件 | 第85页 |
