| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略语对照表 | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 佛手的简介 | 第11页 |
| 1.2 佛手多糖的研究进展 | 第11-12页 |
| 1.2.1 佛手多糖的提取方法 | 第11页 |
| 1.2.2 佛手多糖的分离与结构鉴定 | 第11-12页 |
| 1.2.3 佛手多糖的功能活性研究 | 第12页 |
| 1.3 植物多糖提取分离与鉴定的研究进展 | 第12-17页 |
| 1.3.1 多糖的提取方法 | 第12-14页 |
| 1.3.2 多糖的分离纯化方法 | 第14-15页 |
| 1.3.3 多糖的分析鉴定方法 | 第15-17页 |
| 1.4 多糖保护酒精性肝损伤的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.4.1 乙醇的代谢 | 第17页 |
| 1.4.2 酒精性肝病的形成 | 第17-18页 |
| 1.4.3 保护酒精性肝损伤的研究方法 | 第18-19页 |
| 1.5 本课题的研究意义及内容 | 第19-21页 |
| 1.5.1 研究意义 | 第19页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第19-21页 |
| 第二章 不同提取方法对佛手多糖理化性质和活性的影响 | 第21-28页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.3.1 不同方法提取佛手多糖 | 第22页 |
| 2.3.2 不同提取方法所得佛手多糖理化性质的测定 | 第22-23页 |
| 2.3.3 不同提取方法所得佛手多糖对乙醇脱氢酶活性的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.4 数据统计与分析 | 第24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-27页 |
| 2.4.1 不同提取方法对佛手多糖理化性质的影响 | 第24-26页 |
| 2.4.2 不同提取方法所得佛手多糖对乙醇脱氢酶活性的影响 | 第26-27页 |
| 2.5 本章小结 | 第27-28页 |
| 第三章 佛手多糖超声-微波协同提取的工艺优化 | 第28-34页 |
| 3.1 引言 | 第28页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第28页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第28页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第28页 |
| 3.3 实验方法 | 第28-29页 |
| 3.3.1 提取工艺 | 第28-29页 |
| 3.3.2 单因素实验 | 第29页 |
| 3.3.3 响应面实验 | 第29页 |
| 3.3.4 数据处理与分析 | 第29页 |
| 3.4 实验结果 | 第29-33页 |
| 3.4.1 苯酚硫酸法测多糖含量 | 第29-30页 |
| 3.4.2 单因素实验 | 第30-31页 |
| 3.4.3 响应面优化结果 | 第31-33页 |
| 3.5 本章小结 | 第33-34页 |
| 第四章 佛手多糖的分离纯化与结构鉴定 | 第34-42页 |
| 4.1 引言 | 第34页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第34页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第34页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第34页 |
| 4.3 实验方法 | 第34-36页 |
| 4.3.1 佛手多糖的提取和脱蛋白脱色 | 第34-35页 |
| 4.3.2 佛手多糖的阴离子交换柱层析纯化 | 第35页 |
| 4.3.3 佛手多糖的凝胶柱层析纯化 | 第35页 |
| 4.3.4 佛手多糖理化性质测定 | 第35页 |
| 4.3.5 超滤离心技术对佛手多糖的纯化 | 第35页 |
| 4.3.6 数据处理与分析 | 第35-36页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第36-41页 |
| 4.4.1 佛手多糖阴离子交换柱分离 | 第36页 |
| 4.4.2 佛手多糖葡聚糖凝胶柱分离 | 第36-37页 |
| 4.4.3 佛手多糖分级组分的纯度及超滤离心技术对纯度的影响 | 第37-38页 |
| 4.4.4 佛手多糖各分级组分的分子量 | 第38-39页 |
| 4.4.5 佛手多糖各分级组分的单糖组成 | 第39-40页 |
| 4.4.6 佛手多糖各分级组分的红外光谱 | 第40-41页 |
| 4.4.7 佛手多糖各分级组分的糖醛酸含量 | 第41页 |
| 4.5 本章小结 | 第41-42页 |
| 第五章 佛手多糖的体外护肝活性 | 第42-55页 |
| 5.1 引言 | 第42页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第42页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第42页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第42页 |
| 5.3 实验方法 | 第42-46页 |
| 5.3.1 佛手多糖各分级组分的抗氧化作用 | 第42-43页 |
| 5.3.2 佛手多糖各分级组分对乙醇脱氢酶活性的影响 | 第43页 |
| 5.3.3 佛手多糖各分级组分对体外酒精性肝细胞损伤的影响 | 第43-46页 |
| 5.3.4 数据处理与统计 | 第46页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第46-53页 |
| 5.4.1 佛手多糖各分级组分的抗氧化作用 | 第46-48页 |
| 5.4.2 佛手多糖各分级组分对乙醇脱氢酶活性的作用 | 第48-49页 |
| 5.4.3 HepG2细胞酒精性肝损伤的模型 | 第49页 |
| 5.4.4 佛手多糖各分级组分对HepG2的细胞毒性试验 | 第49-50页 |
| 5.4.5 佛手多糖及分级组分对酒精诱导细胞的细胞活力影响 | 第50页 |
| 5.4.6 佛手多糖各分级组分对酒精诱导细胞的酶活力影响 | 第50-53页 |
| 5.5 本章小结 | 第53-55页 |
| 主要结论与展望 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第65页 |
