摘要 | 第3-4页 |
ABSTRACT | 第4页 |
第一章 前言 | 第8-11页 |
1.1 突触传递与可塑性 | 第8页 |
1.2 LRP4在神经系统中的功能作 | 第8-10页 |
1.2.1 LRP4在外周神经系统中的研究 | 第8-9页 |
1.2.2 LRP4在中枢神经系统中的研究 | 第9-10页 |
1.3 本课题的研究内容及意义 | 第10-11页 |
第二章 实验小鼠的培育及鉴定 | 第11-17页 |
2.1 实验材料与方法 | 第11-14页 |
2.1.1 实验动物 | 第11页 |
2.1.2 实验主要仪器 | 第11页 |
2.1.3 实验主要药品和试剂 | 第11-12页 |
2.1.4 实验过程与方法 | 第12-14页 |
2.1.4.1 小鼠基因型鉴定 | 第12-13页 |
2.1.4.2 Western-blot验证敲除效果 | 第13-14页 |
2.1.5 实验数据分析 | 第14页 |
2.2 实验结果 | 第14-15页 |
2.2.1 凝胶电泳试验鉴定基因型 | 第14-15页 |
2.2.2 Western-blot验证hGFAP-Lrp4-/-小鼠敲除效果 | 第15页 |
2.3 章节小结与讨论 | 第15-17页 |
第三章 LRP4在大脑海马区的表达检测 | 第17-23页 |
3.1 实验材料与方法 | 第17-20页 |
3.1.1 实验动物 | 第17页 |
3.1.2 实验主要仪器 | 第17页 |
3.1.3 实验主要药品和试剂 | 第17-18页 |
3.1.4 实验过程与方法 | 第18-20页 |
3.1.4.1 实时荧光定量PCR | 第18-19页 |
3.1.4.2 LacZ染色 | 第19-20页 |
3.1.5 实验数据分析 | 第20页 |
3.2 实验结果 | 第20-21页 |
3.2.1 RT-qPCR检测Lrp4表达的脑区 | 第20页 |
3.2.2 LacZ染色观察Lrp4海马表达区域 | 第20-21页 |
3.3 章节小结与讨论 | 第21-23页 |
第四章 LRP4敲除鼠DG区抑制性信号相关电生理记录 | 第23-30页 |
4.1 实验材料与方法 | 第23-26页 |
4.1.1 实验动物 | 第23页 |
4.1.2 实验主要仪器 | 第23页 |
4.1.3 实验主要药品和试剂 | 第23-24页 |
4.1.4 实验过程与方法 | 第24-26页 |
4.1.4.1 试剂配制 | 第24页 |
4.1.4.2 脑片制备 | 第24-25页 |
4.1.4.3 全细胞膜片钳操作 | 第25页 |
4.1.4.4 自发性抑制性突触后电流记录 | 第25页 |
4.1.4.5 紧张性抑制性电流记录 | 第25-26页 |
4.1.5 实验数据分析 | 第26页 |
4.2 实验结果 | 第26-28页 |
4.2.1 DG区颗粒细胞电特性分析 | 第26页 |
4.2.2 DG区颗粒细胞自发性抑制性突触后电流记录 | 第26-27页 |
4.2.3 DG区颗粒细胞紧张性电流I-tonic记录 | 第27-28页 |
4.3 章节小结与讨论 | 第28-30页 |
第五章 LRP4敲除鼠DG区GABA受体亚基的表达检测 | 第30-35页 |
5.1 实验材料与方法 | 第30-32页 |
5.1.1 实验动物 | 第30页 |
5.1.2 实验主要仪器 | 第30页 |
5.1.3 实验主要药品和试剂 | 第30页 |
5.1.4 实验过程与方法 | 第30-32页 |
5.1.4.1 实时荧光定量PCR | 第30-32页 |
5.1.5 实验数据分析 | 第32页 |
5.2 实验结果 | 第32-34页 |
5.2.1 通过RT-qPCR确定剥离组织是否为海马DG区 | 第32-33页 |
5.2.2 qRT-PCR检测Lrp4敲除后海马DG区GABA_α受体亚基的表达 | 第33-34页 |
5.3 章节小结与讨论 | 第34-35页 |
第六章 结论与展望 | 第35-39页 |
6.1 结论 | 第35-36页 |
6.1.1 hGFAP-Lrp4-/-小鼠特异性敲除中枢系统Lrp | 第35页 |
6.1.2 LRP4在哺乳动物大脑海马区存在表达 | 第35页 |
6.1.3 LRP4敲除会抑制海马DG区抑制性信号传递 | 第35-36页 |
6.1.4 LRP4敲除会抑制海马DG区GABAα5表达 | 第36页 |
6.2 展望 | 第36-39页 |
6.2.1 Lrp4在哺乳动物海马区细胞定位的研究 | 第36-37页 |
6.2.2 Lrp4在中枢系统抑制性递质传递中调节作用的机制研究 | 第37-39页 |
致谢 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-41页 |