摘要 | 第10-13页 |
Abstract | 第13-16页 |
缩略词表 | 第17-20页 |
第一章 文献综述 | 第20-39页 |
1 免疫调节肽的研究进展 | 第20-24页 |
1.1 免疫调节肽的概述 | 第20页 |
1.2 免疫调节肽的种类和来源 | 第20-24页 |
2 匹多莫德的简介 | 第24-28页 |
2.1 匹多莫德的合成 | 第24-25页 |
2.2 匹多莫德的功能概述 | 第25-26页 |
2.3 毒理性研究 | 第26-27页 |
2.4 药动力学和生物利用度 | 第27页 |
2.5 临床应用 | 第27-28页 |
3 巨噬细胞极化 | 第28-37页 |
3.1 巨噬细胞的分类及特点概述 | 第28页 |
3.2 巨噬细胞的极化类型 | 第28-30页 |
3.3 巨噬细胞极化相关的信号通路 | 第30-34页 |
3.4 巨噬细胞极化信号转导的调控 | 第34-35页 |
3.5 巨噬细胞极化在疾病过程中的作用 | 第35-37页 |
4 本研究的目的意义和主要内容 | 第37-39页 |
4.1 本研究的目的意义 | 第37页 |
4.2 研究的主要内容 | 第37-39页 |
第二章 匹多莫德对小鼠原代巨噬细胞极化及其功能的影响 | 第39-56页 |
1 引言 | 第39页 |
2 材料与方法 | 第39-46页 |
2.1 实验动物 | 第39页 |
2.2 实验试剂 | 第39-41页 |
2.3 主要仪器 | 第41页 |
2.4 实验方法 | 第41-45页 |
2.5 统计学分析 | 第45-46页 |
3 结果与分析 | 第46-53页 |
3.1 不同剂量Pido处理对原代巨噬细胞的影响 | 第46页 |
3.2 Pido对M1型巨噬细胞极化的影响 | 第46-47页 |
3.3 Pido对M2型巨噬细胞极化的影响 | 第47-50页 |
3.4 Pido处理对M2型巨噬细胞功能的影响 | 第50-53页 |
3.5 Pido处理M2型巨噬细胞对STAT6信号分子磷酸化的影响 | 第53页 |
4 讨论 | 第53-55页 |
5 小结 | 第55-56页 |
第三章 匹多莫德对小鼠哮喘模型的影响 | 第56-77页 |
1 引言 | 第56页 |
2 材料与方法 | 第56-61页 |
2.1 实验动物 | 第56页 |
2.2 实验材料 | 第56-58页 |
2.3 实验分组 | 第58页 |
2.4 实验方法 | 第58-61页 |
2.5 统计分析 | 第61页 |
3 结果与分析 | 第61-74页 |
3.1 Pido对哮喘小鼠BALF中白细胞和嗜酸性粒细胞计数的影响 | 第61-62页 |
3.2 哮喘模型小鼠血清中IgE的含量 | 第62-63页 |
3.3 哮喘模型小鼠BALF中细胞因子的含量 | 第63-65页 |
3.4 各组小鼠肺组织和气管组织的病理变化 | 第65-68页 |
3.5 各组小鼠气道组织黏液物质的改变 | 第68-70页 |
3.6 免疫组织化学法检测肺组织Fizz1蛋白表达 | 第70-72页 |
3.7 免疫组织化学法检测肺组织Arg1蛋白表达 | 第72-74页 |
4 讨论 | 第74-76页 |
5 小结 | 第76-77页 |
第四章 匹多莫德诱导巨噬细胞极化对小鼠炎症性肠炎的影响 | 第77-93页 |
1 引言 | 第77页 |
2 材料与方法 | 第77-82页 |
2.1 实验动物 | 第77-78页 |
2.2 实验试剂与仪器设备 | 第78-79页 |
2.3 实验方法 | 第79-82页 |
2.4 统计学分析 | 第82页 |
3 结果与分析 | 第82-89页 |
3.1 结肠炎模型小鼠体重变化 | 第82-83页 |
3.2 小鼠结肠炎模型的DAI评分 | 第83-84页 |
3.3 DSS小鼠结肠大体情况和结肠外观 | 第84-86页 |
3.4 小鼠血清中IFN-γ和TGF-β1含量变化 | 第86-87页 |
3.5 小鼠结肠组织的病理分析 | 第87-89页 |
4 讨论 | 第89-91页 |
5 小结 | 第91-93页 |
第五章 结论、创新点与研究展望 | 第93-95页 |
1 结论 | 第93页 |
2 创新点 | 第93-94页 |
3 研究展望 | 第94-95页 |
参考文献 | 第95-114页 |
致谢 | 第114-116页 |
个人简历 | 第116-117页 |