摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
1 文献综述 | 第10-22页 |
1.1 花生概况 | 第10-11页 |
1.1.1 花生的起源和分布 | 第10页 |
1.1.2 花生属植物的分类 | 第10-11页 |
1.2 花生产量相关性状的研究进展 | 第11页 |
1.3 分子标记技术的发展 | 第11-14页 |
1.3.1 DNA 多态性研究 | 第11-12页 |
1.3.2 常见的几种分子标记 | 第12-13页 |
1.3.3 常见几种 DNA 分子标记技术的应用 | 第13-14页 |
1.4 SSR 分子标记在花生育种中的应用 | 第14-18页 |
1.4.1 花生遗传图谱构建 | 第14-16页 |
1.4.2 花生遗传多样性分析 | 第16-17页 |
1.4.3 花生分子标记辅助选择 | 第17-18页 |
1.5 遗传连锁图谱的构建 | 第18-19页 |
1.5.1 亲本的选择 | 第18页 |
1.5.2 作图群体的构建 | 第18页 |
1.5.3 分子标记的筛选 | 第18-19页 |
1.5.4 连锁分析 | 第19页 |
1.5.5 分子标记的染色体定位 | 第19页 |
1.6 QTL 定位的研究进展 | 第19-22页 |
1.6.1 数量性状的研究进展 | 第19-20页 |
1.6.2 QTL 定位的必要条件 | 第20页 |
1.6.3 QTL 定位的原理 | 第20页 |
1.6.4 QTL 定位的方法 | 第20页 |
1.6.5 花生重要性状 QTL 定位的研究进展 | 第20-21页 |
1.6.6 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
2 材料和方法 | 第22-27页 |
2.1 花生重组自交系(白沙 1016×A.monticola)的构建 | 第22页 |
2.1.1 亲本特征 | 第22页 |
2.1.2 RIL 群体的构建 | 第22页 |
2.2 性状考查 | 第22-23页 |
2.3 研究用到的 SSR 引物 | 第23页 |
2.4 SSR 分子标记筛选 | 第23-26页 |
2.4.1 花生基因组 DNA 的提取及浓度检测 | 第23-24页 |
2.4.2 PCR 扩增 | 第24页 |
2.4.3 PCR 产物的电泳检测 | 第24-26页 |
2.4.4 电泳结果的赋值和统计 | 第26页 |
2.4.5 SSR 遗传图谱的构建 | 第26页 |
2.5 QTL 定位 | 第26-27页 |
3 结果与分析 | 第27-38页 |
3.1 SSR 引物多态性分析 | 第27页 |
3.2 遗传图谱的构建 | 第27-31页 |
3.3 QTL 定位 | 第31-38页 |
4 讨论 | 第38-42页 |
4.1 SSR 遗传图谱 | 第38-39页 |
4.2 产量相关性状的 QTL | 第39-41页 |
4.2.1 不同环境下产量相关性状的 QTL | 第39-40页 |
4.2.2 有关 Lg19 上的标记 ARS445 的新发现 | 第40页 |
4.2.3 遗传连锁图谱上有 5 个 QTL 分布密集区 | 第40-41页 |
4.3 分子标记的开发 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-48页 |
致谢 | 第48页 |