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两株海洋真菌的次级代谢产物研究及C2A的培养基优化

Content第7-10页
常用英文缩写第10-12页
摘要第12-14页
Abstract第14-15页
1 前言第16-27页
    1.1 引言第16-17页
        1.1.1 天然产物是药物的重要来源第16-17页
        1.1.2 微生物是天然产物的重要来源第17页
    1.2 海洋微生物天然产物的研究进展第17-24页
        1.2.1 萜类化合物的研究第18-19页
        1.2.2 聚酮类化合物的研究第19-20页
        1.2.3 肽类化合物的研究第20-22页
        1.2.4 生物碱类和含氮类化合物的研究第22-23页
        1.2.5 脂类化合物的研究第23-24页
    1.3 微生物发酵过程优化策略第24-26页
        1.3.1 单次单因素法(one-factor-at-a-time)第24页
        1.3.2 正交试验设计第24-25页
        1.3.3 Plackett-Burman实验设计第25页
        1.3.4 响应面设计法第25-26页
    1.4 本课题的研究目的、内容和意义第26-27页
2 材料与方法第27-48页
    2.1 材料第27-34页
        2.1.1 菌株来源第27页
        2.1.2 抗菌活性测定指示菌第27页
        2.1.3 肿瘤细胞株第27-28页
        2.1.4 主要试剂及耗材第28-29页
        2.1.5 主要仪器第29页
        2.1.6 常用培养基第29-32页
        2.1.7 抗肿瘤活性测试常用试剂第32页
        2.1.8 抗氧化活性测试常用试剂第32页
        2.1.9 抗酪氨酸酶活性测试常用试剂第32-33页
        2.1.10 抗乙酰胆碱酯酶活性测试常用试剂第33页
        2.1.11 TCL显色剂第33-34页
    2.2 方法第34-48页
        2.2.1 C2A培养基优化路线第34-35页
        2.2.2 发酵培养及代谢产物提取方法第35页
        2.2.3 天然产物的分离纯化方法第35-38页
        2.2.4 化合物结构的鉴定方法第38-39页
        2.2.5 化合物生物活性的测定第39-41页
        2.2.6 活性化合物C2A定量分析———高效液相色谱(HPLC)第41-42页
        2.2.7 C2A生产菌株CM9a的培养基优化第42-48页
3 结果与分析第48-97页
    3.1 真菌ML-226的次级代谢产物研究第48-68页
        3.1.1 菌株ML-226发酵以及发酵产物的提取第48页
        3.1.2 次级代谢产物的分离纯化第48-51页
        3.1.3 化合物结构的解析第51-68页
    3.2 真菌0221-018的次级代谢产物研究第68-82页
        3.2.1 菌株0221-018发酵培养基的筛选第68-69页
        3.2.2 菌株0221-018发酵及发酵产物的提取第69-70页
        3.2.3 次级代谢产物的分离纯化第70-72页
        3.2.4 化合物的解析第72-81页
        3.2.5 化合物的活性研究第81-82页
    3.3 琼脂固体培养基发酵条件优化第82-97页
        3.3.1 C2A的分离制备第82-84页
        3.3.2 C2A定量分析——高效液相色谱(HPLC)第84-88页
        3.3.3 基本培养基的筛选第88页
        3.3.4 Plackett-Burman实验结果第88-90页
        3.3.5 单因素优化实验第90-92页
        3.3.6 CCD响应面优化第92-97页
4 讨论与结论第97-104页
    4.1 讨论第97页
    4.2 菌株ML-226的次级代谢产物研究第97-99页
    4.3 菌株0221-018的次级代谢产物研究第99-101页
    4.4 培养基优化第101-102页
    4.5 结论第102-103页
    4.6 展望第103-104页
参考文献第104-110页
附录 本论文分离鉴定的化合物第110-112页
致谢第112页

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