Content | 第7-10页 |
常用英文缩写 | 第10-12页 |
摘要 | 第12-14页 |
Abstract | 第14-15页 |
1 前言 | 第16-27页 |
1.1 引言 | 第16-17页 |
1.1.1 天然产物是药物的重要来源 | 第16-17页 |
1.1.2 微生物是天然产物的重要来源 | 第17页 |
1.2 海洋微生物天然产物的研究进展 | 第17-24页 |
1.2.1 萜类化合物的研究 | 第18-19页 |
1.2.2 聚酮类化合物的研究 | 第19-20页 |
1.2.3 肽类化合物的研究 | 第20-22页 |
1.2.4 生物碱类和含氮类化合物的研究 | 第22-23页 |
1.2.5 脂类化合物的研究 | 第23-24页 |
1.3 微生物发酵过程优化策略 | 第24-26页 |
1.3.1 单次单因素法(one-factor-at-a-time) | 第24页 |
1.3.2 正交试验设计 | 第24-25页 |
1.3.3 Plackett-Burman实验设计 | 第25页 |
1.3.4 响应面设计法 | 第25-26页 |
1.4 本课题的研究目的、内容和意义 | 第26-27页 |
2 材料与方法 | 第27-48页 |
2.1 材料 | 第27-34页 |
2.1.1 菌株来源 | 第27页 |
2.1.2 抗菌活性测定指示菌 | 第27页 |
2.1.3 肿瘤细胞株 | 第27-28页 |
2.1.4 主要试剂及耗材 | 第28-29页 |
2.1.5 主要仪器 | 第29页 |
2.1.6 常用培养基 | 第29-32页 |
2.1.7 抗肿瘤活性测试常用试剂 | 第32页 |
2.1.8 抗氧化活性测试常用试剂 | 第32页 |
2.1.9 抗酪氨酸酶活性测试常用试剂 | 第32-33页 |
2.1.10 抗乙酰胆碱酯酶活性测试常用试剂 | 第33页 |
2.1.11 TCL显色剂 | 第33-34页 |
2.2 方法 | 第34-48页 |
2.2.1 C2A培养基优化路线 | 第34-35页 |
2.2.2 发酵培养及代谢产物提取方法 | 第35页 |
2.2.3 天然产物的分离纯化方法 | 第35-38页 |
2.2.4 化合物结构的鉴定方法 | 第38-39页 |
2.2.5 化合物生物活性的测定 | 第39-41页 |
2.2.6 活性化合物C2A定量分析———高效液相色谱(HPLC) | 第41-42页 |
2.2.7 C2A生产菌株CM9a的培养基优化 | 第42-48页 |
3 结果与分析 | 第48-97页 |
3.1 真菌ML-226的次级代谢产物研究 | 第48-68页 |
3.1.1 菌株ML-226发酵以及发酵产物的提取 | 第48页 |
3.1.2 次级代谢产物的分离纯化 | 第48-51页 |
3.1.3 化合物结构的解析 | 第51-68页 |
3.2 真菌0221-018的次级代谢产物研究 | 第68-82页 |
3.2.1 菌株0221-018发酵培养基的筛选 | 第68-69页 |
3.2.2 菌株0221-018发酵及发酵产物的提取 | 第69-70页 |
3.2.3 次级代谢产物的分离纯化 | 第70-72页 |
3.2.4 化合物的解析 | 第72-81页 |
3.2.5 化合物的活性研究 | 第81-82页 |
3.3 琼脂固体培养基发酵条件优化 | 第82-97页 |
3.3.1 C2A的分离制备 | 第82-84页 |
3.3.2 C2A定量分析——高效液相色谱(HPLC) | 第84-88页 |
3.3.3 基本培养基的筛选 | 第88页 |
3.3.4 Plackett-Burman实验结果 | 第88-90页 |
3.3.5 单因素优化实验 | 第90-92页 |
3.3.6 CCD响应面优化 | 第92-97页 |
4 讨论与结论 | 第97-104页 |
4.1 讨论 | 第97页 |
4.2 菌株ML-226的次级代谢产物研究 | 第97-99页 |
4.3 菌株0221-018的次级代谢产物研究 | 第99-101页 |
4.4 培养基优化 | 第101-102页 |
4.5 结论 | 第102-103页 |
4.6 展望 | 第103-104页 |
参考文献 | 第104-110页 |
附录 本论文分离鉴定的化合物 | 第110-112页 |
致谢 | 第112页 |