| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-25页 |
| 1.1 植物嵌合体的研究概况 | 第12-17页 |
| 1.1.1 植物嵌合体的形成机制 | 第12-13页 |
| 1.1.2 植物嵌合体的类型 | 第13-15页 |
| 1.1.3 植物嵌合体的产生 | 第15-16页 |
| 1.1.4 植物嵌合体的遗传 | 第16页 |
| 1.1.5 花色嵌合体在育种中的应用 | 第16-17页 |
| 1.2 菊花花色素生物合成相关基因的研究进展 | 第17-21页 |
| 1.2.1 花色素的种类 | 第17-18页 |
| 1.2.2 花色素苷的生物合成途径 | 第18页 |
| 1.2.3 花色素苷生物合成相关基因 | 第18-21页 |
| 1.3 实时荧光定量 PCR 的研究进展 | 第21-24页 |
| 1.3.1 实时荧光定量 PCR 的技术原理 | 第21-22页 |
| 1.3.2 实时荧光定量 PCR 的定量方法 | 第22-23页 |
| 1.3.3 实时荧光定量 PCR 在观赏植物的应用 | 第23页 |
| 1.3.4 实时荧光定量 PCR 内参基因的选择 | 第23-24页 |
| 1.4 本研究的意义和目的 | 第24-25页 |
| 第2章 菊花花色嵌合体生物学特性及嵌合性状分离的研究 | 第25-35页 |
| 2.1 材料与方法 | 第25-27页 |
| 2.1.1 植物材料及扦插繁殖 | 第25页 |
| 2.1.2 花蕾发育进程调查 | 第25页 |
| 2.1.3 开花时期调查 | 第25-26页 |
| 2.1.4 补光处理对花芽分化的影响 | 第26页 |
| 2.1.5 花瓣培养 | 第26-27页 |
| 2.1.6 花瓣横截面的观察 | 第27页 |
| 2.1.7 插穗采集与整理 | 第27页 |
| 2.2 结果与分析 | 第27-32页 |
| 2.2.1 菊花花色嵌合体‘su-07’嵌合形态特征分析 | 第27-28页 |
| 2.2.2 菊花花色嵌合体‘su-07’花蕾发育及开花进程分析 | 第28-29页 |
| 2.2.3 菊花花色嵌合体的光周期敏感型分析 | 第29页 |
| 2.2.4 花瓣组培对嵌合性状的分离及固定分析 | 第29-31页 |
| 2.2.5 扦插繁育方法对嵌合性状的分离及固定分析 | 第31-32页 |
| 2.3 讨论 | 第32-35页 |
| 第3章 菊花花色嵌合体花色素成分的分析 | 第35-43页 |
| 3.1 材料与方法 | 第35-38页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第35页 |
| 3.1.2 仪器与试剂 | 第35-36页 |
| 3.1.3 花色素中总黄酮含量的测定 | 第36-38页 |
| 3.1.4 花色素的紫外-可见光谱（UV-VIS）测定 | 第38页 |
| 3.1.5 高效液相色谱（HPLC）条件 | 第38页 |
| 3.2 结果与分析 | 第38-40页 |
| 3.2.1 菊花花色嵌合体异色花瓣中总黄酮含量的分析 | 第38-39页 |
| 3.2.2 菊花花色嵌合体异色花瓣中花色素种类的 UV-VIS 分析 | 第39页 |
| 3.2.3 菊花花色嵌合体异色花瓣中花色素种类的 HPLC 分析 | 第39-40页 |
| 3.3 讨论 | 第40-43页 |
| 第4章 菊花花色相关基因 cDNA 克隆及分析 | 第43-64页 |
| 4.1 材料与方法 | 第43-45页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第43页 |
| 4.1.2 主要试剂与药品 | 第43-44页 |
| 4.1.3 主要仪器与设备 | 第44页 |
| 4.1.4 总 RNA 的提取 | 第44页 |
| 4.1.5 cDNA 第一条链的合成 | 第44-45页 |
| 4.1.6 PCR 扩增片段的回收与连接 | 第45页 |
| 4.1.7 转化 | 第45页 |
| 4.1.8 重组质粒的筛选 | 第45页 |
| 4.2 结果与分析 | 第45-61页 |
| 4.2.1 花瓣总 RNA 的质量分析 | 第45-46页 |
| 4.2.2 菊花花色嵌合体 ANS 基因 cDNA 序列的克隆及分析 | 第46-56页 |
| 4.2.3 GAPDH 基因 cDNA 序列克隆及分析 | 第56-61页 |
| 4.3 讨论 | 第61-64页 |
| 第5章 菊花花色嵌合体花色素相关基因的表达分析 | 第64-79页 |
| 5.1 材料与方法 | 第64-66页 |
| 5.1.1 植物材料 | 第64-65页 |
| 5.1.2 主要试剂与仪器设备 | 第65页 |
| 5.1.3 花瓣总 RNA 的提取 | 第65页 |
| 5.1.4 cDNA 第一条链的合成 | 第65页 |
| 5.1.5 引物设计 | 第65-66页 |
| 5.1.6 标准品的制备 | 第66页 |
| 5.1.7 实时定量 PCR | 第66页 |
| 5.1.8 数据处理 | 第66页 |
| 5.2 结果与分析 | 第66-75页 |
| 5.2.1 花瓣总 RNA 的质量分析 | 第66-67页 |
| 5.2.2 内参基因的 PCR 产物的分析 | 第67-69页 |
| 5.2.3 内参基因实时定量 PCR 的结果 | 第69-70页 |
| 5.2.4 内参基因表达稳定性分析 | 第70页 |
| 5.2.5 目的基因的 PCR 产物的分析 | 第70-71页 |
| 5.2.6 EF 和目的基因的标准曲线 | 第71-74页 |
| 5.2.7 目的基因在菊花花色嵌合体不同花色中的差异表达 | 第74-75页 |
| 5.3 讨论 | 第75-79页 |
| 第6章 全文结论 | 第79-82页 |
| 6.1 结论 | 第79-80页 |
| 6.2 特色与创新点 | 第80-81页 |
| 6.3 有待进一步研究的课题 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-93页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文 | 第93-94页 |
| 英文缩略词 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
