| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-18页 |
| 1.1 文献综述 | 第11-15页 |
| 1.1.1 木兰科植物多样性研究概况 | 第11-12页 |
| 1.1.2 过氧化物在生物多样性中的应用 | 第12-13页 |
| 1.1.3 过氧化物酶的分离纯化及固定化研究 | 第13-14页 |
| 1.1.4 过氧化物酶在环境污染物中的应用 | 第14-15页 |
| 1.2 研究意义、研究内容及创新点 | 第15-18页 |
| 1.2.1 研究意义 | 第15-16页 |
| 1.2.2 研究内容 | 第16-17页 |
| 1.2.3 创新点 | 第17-18页 |
| 第2章 木兰科植物过氧化物酶同工酶研究 | 第18-30页 |
| 2.1 试剂与材料 | 第18-20页 |
| 2.1.1 试剂仪器 | 第18页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.3 试剂配制 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 酶蛋白的提取 | 第20-21页 |
| 2.2.2 电泳样品的制备 | 第21页 |
| 2.2.3 过氧化物同工酶电泳 | 第21-23页 |
| 2.2.4 过氧化物同工酶谱染色 | 第23页 |
| 2.3 结果与分析 | 第23-28页 |
| 2.3.1 木兰科同工酶电泳缓冲系统筛选 | 第23-24页 |
| 2.3.2 上样量对同工酶电泳结果的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.3 生长时期对同工酶电泳结果的影响 | 第25页 |
| 2.3.4 同工酶谱带及模式图的获取 | 第25-26页 |
| 2.3.5 19 种木兰科植物同工酶谱型分析 | 第26-27页 |
| 2.3.6 同工酶谱聚类分析 | 第27-28页 |
| 2.4 结论与讨论 | 第28-30页 |
| 第3章 深山含笑过氧化物酶的分离纯化 | 第30-40页 |
| 3.1 试剂与材料 | 第30-31页 |
| 3.1.1 试剂仪器 | 第30页 |
| 3.1.2 试剂的配制 | 第30-31页 |
| 3.1.3 实验材料 | 第31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-35页 |
| 3.2.1 粗酶液的制备 | 第31-32页 |
| 3.2.2 双水相萃取 | 第32-33页 |
| 3.2.3 蛋白质层析 | 第33页 |
| 3.2.4 过氧化物酶蛋白电泳纯度分析 | 第33页 |
| 3.2.5 过氧化物酶活力及蛋白含量测定 | 第33-34页 |
| 3.2.6 酶纯度分析方法 | 第34页 |
| 3.2.7 酶的部分性质研究 | 第34-35页 |
| 3.3 结果与分析 | 第35-38页 |
| 3.3.1 过氧化物酶分离纯化 | 第35-36页 |
| 3.3.2 过氧化物酶蛋白纯度分析 | 第36页 |
| 3.3.3 过氧化物酶的最适温度 | 第36-37页 |
| 3.3.4 过氧化物酶的最适pH | 第37页 |
| 3.3.5 过氧化物酶的温度稳定性 | 第37-38页 |
| 3.3.6 过氧化物酶的酸碱稳定性 | 第38页 |
| 3.4 结论与讨论 | 第38-40页 |
| 第4章 深山含笑过氧化物酶清除BPA的应用研究 | 第40-49页 |
| 4.1 试剂与材料 | 第40页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第40页 |
| 4.1.2 实验材料 | 第40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-43页 |
| 4.2.1 过氧化物酶浓度对BPA降解的影响 | 第41页 |
| 4.2.2 温度对过氧化物酶降解BPA的影响 | 第41页 |
| 4.2.3 pH对过氧化物酶降解BPA的影响 | 第41-42页 |
| 4.2.4 H2O2/BPA摩尔浓度比值对降解BPA的影响 | 第42页 |
| 4.2.5 富里酸浓度对降解BPA的影响 | 第42页 |
| 4.2.6 腐植酸浓度对降解BPA的影响 | 第42-43页 |
| 4.3 结果与分析 | 第43-47页 |
| 4.3.1 最佳清除酶浓度确定 | 第43页 |
| 4.3.2 pH对过氧化物酶清除BPA的影响 | 第43-44页 |
| 4.3.3 温度对过氧化物酶清除BPA的影响 | 第44-45页 |
| 4.3.4 最佳清除H2O2/BPA摩尔浓度比值 | 第45页 |
| 4.3.5 富里酸对过氧化物酶清除BPA的影响 | 第45-46页 |
| 4.3.6 腐殖酸对过氧化物酶清除BPA的影响 | 第46-47页 |
| 4.4 结论与讨论 | 第47-49页 |
| 第5章 深山含笑过氧化物酶的固定化研究 | 第49-63页 |
| 5.1 试剂与材料 | 第49页 |
| 5.1.1 实验试剂 | 第49页 |
| 5.1.2 实验材料 | 第49页 |
| 5.2 实验方法 | 第49-51页 |
| 5.2.1 Fe3O4-海藻酸钠吸附交联法 | 第49-50页 |
| 5.2.2 海藻酸钠包埋法 | 第50页 |
| 5.2.3 固定化酶的性质研究 | 第50-51页 |
| 5.3 结果与分析 | 第51-61页 |
| 5.3.1 Fe3O4-海藻酸钠交联法优化结果 | 第51-56页 |
| 5.3.2 海藻酸钠包埋法优化结果 | 第56-60页 |
| 5.3.3 固定化酶与游离酶的最适反应温度 | 第60页 |
| 5.3.4 固定化酶与游离酶的最适反应pH | 第60-61页 |
| 5.3.5 固定化酶循环使用次数 | 第61页 |
| 5.4 结论与讨论 | 第61-63页 |
| 结论 | 第63-66页 |
| 参考文献 | 第66-75页 |
| 附录 | 第75-76页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |