| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 绪论 | 第14-22页 |
| 1.1 玉米及加工现状 | 第14页 |
| 1.2 玉米蛋白粉的组成及应用现状 | 第14-16页 |
| 1.2.1 组成及性质 | 第14-15页 |
| 1.2.2 玉米蛋白粉的综合利用情况 | 第15-16页 |
| 1.3 玉米蛋白粉的改性 | 第16-18页 |
| 1.3.1 玉米蛋白粉的酶法改性 | 第17-18页 |
| 1.3.2 玉米蛋白粉的微生物法改性 | 第18页 |
| 1.4 玉米蛋白肽 | 第18-20页 |
| 1.4.1 玉米蛋白肽的生理活性 | 第18-19页 |
| 1.4.2 玉米蛋白肽的开发价值及应用前景 | 第19-20页 |
| 1.5 课题的立题依据及研究内容 | 第20-22页 |
| 2 玉米蛋白粉的预处理 | 第22-30页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第22-24页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第22页 |
| 2.1.2 实验材料及试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.2.1 水分的测定 | 第24页 |
| 2.2.2 灰分的测定 | 第24页 |
| 2.2.3 淀粉含量的测定 | 第24页 |
| 2.2.4 脂肪含量的测定 | 第24页 |
| 2.2.5 蛋白质含量的测定 | 第24页 |
| 2.2.6 α-淀粉酶活力的测定 | 第24页 |
| 2.2.7 蛋白酶活力测定 | 第24页 |
| 2.2.8 水解度（DH）的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.9 可溶性蛋白含量测定 | 第25-26页 |
| 2.2.10 玉米蛋白粉的预处理 | 第26页 |
| 2.2.11 玉米蛋白粉的酶解 | 第26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-29页 |
| 2.3.1 玉米蛋白粉成分的测定 | 第26-27页 |
| 2.3.2 α-淀粉酶和蛋白酶活力测定 | 第27页 |
| 2.3.3 各种预处理方法的比较 | 第27-29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-30页 |
| 3 玉米蛋白粉的单酶水解条件研究 | 第30-59页 |
| 3.1 实验材料及仪器 | 第30-32页 |
| 3.1.1 实验原料 | 第30页 |
| 3.1.2 实验材料及试剂 | 第30-31页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第31-32页 |
| 3.1.4 主要溶液 | 第32页 |
| 3.2 实验方法 | 第32-36页 |
| 3.2.1 水解度的测定 | 第32页 |
| 3.2.2 可溶性蛋白含量的测定 | 第32页 |
| 3.2.3 抗氧化活性的测定 | 第32-33页 |
| 3.2.4 蛋白转化率的测定 | 第33页 |
| 3.2.5 蛋白质含量的测定 | 第33页 |
| 3.2.6 蛋白水解物中肽分子量分布的测定 | 第33-35页 |
| 3.2.7 碱性蛋白酶 Alcalase 水解高底物浓度玉米蛋白粉 | 第35页 |
| 3.2.8 风味蛋白酶 Flavourzyme 水解高底物浓度玉米蛋白粉 | 第35页 |
| 3.2.9 复合蛋白酶 Protamex 水解高底物浓度玉米蛋白粉 | 第35-36页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第36-58页 |
| 3.3.1 碱性蛋白酶 Alcalase 水解高底物浓度玉米蛋白粉 | 第36-44页 |
| 3.3.2 风味蛋白酶 Flavourzyme 水解高底物浓度玉米蛋白粉 | 第44-51页 |
| 3.3.3 复合蛋白酶 Protamex 水解高底物浓度玉米蛋白粉 | 第51-58页 |
| 3.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 4 玉米蛋白粉的双酶复合水解条件研究 | 第59-71页 |
| 4.1 实验材料及仪器 | 第59-60页 |
| 4.1.1 实验原料 | 第59页 |
| 4.1.2 实验材料及试剂 | 第59-60页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第60页 |
| 4.2 实验方法 | 第60-61页 |
| 4.2.1 水解度的测定 | 第60页 |
| 4.2.2 可溶性蛋白含量的测定 | 第60页 |
| 4.2.3 抗氧化活性的测定 | 第60页 |
| 4.2.4 蛋白转化率的测定 | 第60-61页 |
| 4.2.5 玉米蛋白粉的双酶酶解 | 第61页 |
| 4.2.6 酶解液分子量分布的测定 | 第61页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第61-70页 |
| 4.3.1 碱性蛋白酶 Alcalase 与其他蛋白酶复合水解玉米蛋白粉的效果 | 第61-63页 |
| 4.3.2 风味蛋白酶 Flavourzyme 与其他蛋白酶复合水解玉米蛋白粉的效果 | 第63-64页 |
| 4.3.3 复合蛋白酶 Protamex 与其他蛋白酶复合水解玉米蛋白粉的效果 | 第64-66页 |
| 4.3.4 酶解液的分子量分布 | 第66-68页 |
| 4.3.5 玉米蛋白粉的双酶酶解效果比较 | 第68-69页 |
| 4.3.6 不同底物浓度玉米蛋白粉双酶水解效果比较 | 第69-70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-71页 |
| 5 纳豆杆菌诱变育种及发酵玉米蛋白粉的研究 | 第71-84页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第71-73页 |
| 5.1.1 实验原料及菌种 | 第71-72页 |
| 5.1.2 实验材料及试剂 | 第72页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第72-73页 |
| 5.1.4 培养基 | 第73页 |
| 5.2 实验方法 | 第73-75页 |
| 5.2.1 可溶性蛋白含量的测定 | 第73页 |
| 5.2.2 抗氧化活性测定 | 第73页 |
| 5.2.3 诱变出发菌株的选取 | 第73页 |
| 5.2.4 紫外线照射剂量的选择 | 第73-74页 |
| 5.2.5 高产蛋白酶纳豆杆菌菌株的选育 | 第74-75页 |
| 5.2.6 纳豆杆菌的种子培养 | 第75页 |
| 5.2.7 纳豆杆菌发酵高底物浓度玉米蛋白粉的条件优化 | 第75页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第75-83页 |
| 5.3.1 诱变出发菌株的确定 | 第75-76页 |
| 5.3.2 紫外线诱变剂量的选择 | 第76-77页 |
| 5.3.3 高效降解玉米蛋白菌株的筛选 | 第77-78页 |
| 5.3.4 高效降解玉米蛋白菌株的遗传稳定性 | 第78-79页 |
| 5.3.5 高底物浓度玉米蛋白粉的发酵条件优化 | 第79-83页 |
| 5.4 本章小结 | 第83-84页 |
| 6 玉米蛋白粉发酵液脱色及喷雾干燥制粉 | 第84-104页 |
| 6.1 实验材料与仪器 | 第84-86页 |
| 6.1.1 实验原料及菌种 | 第84页 |
| 6.1.2 实验材料及试剂 | 第84-85页 |
| 6.1.3 实验仪器 | 第85-86页 |
| 6.2 实验方法 | 第86-88页 |
| 6.2.1 可溶性蛋白含量的测定 | 第86页 |
| 6.2.2 脱色率的测定 | 第86页 |
| 6.2.3 蛋白回收率的测定 | 第86页 |
| 6.2.4 发酵液分子量分布的测定 | 第86页 |
| 6.2.5 发酵液固形物含量的测定 | 第86页 |
| 6.2.6 肽粉含水量的测定 | 第86-87页 |
| 6.2.7 肽粉可溶性蛋白回收率的测定 | 第87页 |
| 6.2.8 肽粉得率的测定 | 第87页 |
| 6.2.9 肽粉溶解性的测定 | 第87页 |
| 6.2.10 种子培养 | 第87页 |
| 6.2.11 浓醪发酵玉米蛋白粉 | 第87页 |
| 6.2.12 发酵液的脱色 | 第87页 |
| 6.2.13 发酵液的蒸发浓缩 | 第87页 |
| 6.2.14 发酵液喷雾干燥制粉 | 第87-88页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第88-102页 |
| 6.3.1 发酵液脱色条件的优化 | 第88-96页 |
| 6.3.2 发酵液制粉条件的优化 | 第96-102页 |
| 6.4 本章小结 | 第102-104页 |
| 结论 | 第104-106页 |
| 参考文献 | 第106-111页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第111-112页 |
| 致谢 | 第112-113页 |
