| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 缩略语 | 第8-9页 |
| 目次 | 第9-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-25页 |
| 1.1 可变剪接 | 第12-15页 |
| 1.1.1 可变剪接 | 第12-13页 |
| 1.1.2 可变剪接的类型 | 第13-14页 |
| 1.1.3 可变剪接的意义 | 第14-15页 |
| 1.2 互斥可变剪接 | 第15-18页 |
| 1.2.1 互斥可变剪接的产生 | 第15页 |
| 1.2.2 互斥可变剪接的调控机制 | 第15-18页 |
| 1.3 黑腹果蝇Dscam基因互斥剪接研究进展 | 第18-25页 |
| 1.3.1 黑腹果蝇Dscam基因 | 第18-19页 |
| 1.3.2 黑腹果蝇Dscam外显子簇6互斥剪接模型的提出 | 第19-20页 |
| 1.3.3 黑腹果蝇Dscam外显子簇6互斥剪接模型的证明 | 第20-23页 |
| 1.3.4 黑腹果蝇Dscam外显子簇4、9、17的剪接情况 | 第23-25页 |
| 第二章 实验方案 | 第25-28页 |
| 2.1 研究目的及意义 | 第25-26页 |
| 2.1.1 研究目的 | 第25页 |
| 2.1.2 研究意义 | 第25-26页 |
| 2.2 研究内容 | 第26页 |
| 2.3 技术路线 | 第26-27页 |
| 2.4 载体结构图 | 第27-28页 |
| 第三章 材料与方法 | 第28-41页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第28-30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-41页 |
| 3.2.1 黑腹果蝇全基因组提取 | 第30-31页 |
| 3.2.2 引物设计 | 第31-32页 |
| 3.2.3 PCR扩增目的片段 | 第32-33页 |
| 3.2.4 PCR产物割胶回收 | 第33页 |
| 3.2.5 PCR产物连接T载体 | 第33-34页 |
| 3.2.6 E.coli TG1感受态细胞的制备 | 第34页 |
| 3.2.7 连接产物转化E.coli TG1感受态细胞 | 第34页 |
| 3.2.8 阳性菌落扩大培养 | 第34页 |
| 3.2.9 质粒DNA提取 | 第34-35页 |
| 3.2.10 质粒酶切鉴定 | 第35页 |
| 3.2.11 质粒插入片段序列测序 | 第35-36页 |
| 3.2.12 酶切并回收目的片段 | 第36页 |
| 3.2.13 目的片段与表达载体连接 | 第36页 |
| 3.2.14 表达载体构建及测序 | 第36页 |
| 3.2.15 重组质粒浓度测定 | 第36页 |
| 3.2.16 重组质粒转染果蝇S2细胞 | 第36-37页 |
| 3.2.17 细胞冻存 | 第37-38页 |
| 3.2.18 细胞复苏 | 第38页 |
| 3.2.19 转染后S2细胞总RNA提取 | 第38页 |
| 3.2.20 cDNA第一条链的合成(逆转录) | 第38-39页 |
| 3.2.21 PCR并酶切检测剪接情况 | 第39-40页 |
| 3.2.22 净光密度分析 | 第40-41页 |
| 第四章 结果分析及讨论 | 第41-53页 |
| 4.1 实验结果分析 | 第41-50页 |
| 4.1.1 迷你基因及各突变体载体构建 | 第41-42页 |
| 4.1.1.1 目的基因PCR结果 | 第41页 |
| 4.1.1.2 T载体检测结果 | 第41页 |
| 4.1.1.3 表达载体检测结果 | 第41-42页 |
| 4.1.2 黑腹果蝇Dscam外显子簇6 LCR研究结果 | 第42-50页 |
| 4.1.2.1 Dscam外显子簇6的剪接依赖LCR元件 | 第42-44页 |
| 4.1.2.2 LCR元件的结构 | 第44-46页 |
| 4.1.2.3 △hrp36互斥外显子的剪接需要LCR元件 | 第46-48页 |
| 4.1.2.4 LCR通过增强弱剪接位点信号的方式起作用 | 第48-50页 |
| 4.1.2.5 结论 | 第50页 |
| 4.2 讨论 | 第50-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 个人简历 | 第61页 |
