| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第一章 引言 | 第11-16页 |
| 第一节 真菌多糖研究概况 | 第11页 |
| 第二节 茯苓多糖研究进展 | 第11-12页 |
| 第三节 茯苓多糖的药理作用 | 第12-14页 |
| 1 抗肿瘤活性 | 第12-13页 |
| 2 抗氧化作用 | 第13页 |
| 3 免疫增强作用 | 第13-14页 |
| 3.1 对淋巴器官的影响 | 第13页 |
| 3.2 对T/B细胞的影响 | 第13-14页 |
| 3.3 其他增强免疫作用 | 第14页 |
| 4 抗炎作用 | 第14页 |
| 第四节 茯苓多糖相关产品的研发及展望 | 第14-16页 |
| 1 茯苓多糖新型制剂研究情况 | 第14-15页 |
| 1.1 脂质体 | 第14页 |
| 1.2 纳米微球 | 第14-15页 |
| 2 茯苓多糖保健品研究情况 | 第15页 |
| 3 茯苓多糖的展望 | 第15-16页 |
| 第二章 液态发酵体系茯苓多糖合成研究 | 第16-32页 |
| 第一节 液态发酵体系茯苓多糖合成的优化 | 第16-26页 |
| 1 菌种、仪器与试剂 | 第16-17页 |
| 1.1 实验菌种 | 第16页 |
| 1.2 实验仪器 | 第16-17页 |
| 1.3 实验试剂 | 第17页 |
| 2 实验方法 | 第17-20页 |
| 2.1 菌种活化 | 第17页 |
| 2.2 基础发酵培养 | 第17页 |
| 2.3 单因素考察培养基不同组分对茯苓多糖合成的影响 | 第17-18页 |
| 2.4 茯苓多糖提取与分离纯化 | 第18-19页 |
| 2.5 相关分析方法 | 第19-20页 |
| 3 结果与分析 | 第20-25页 |
| 3.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第20页 |
| 3.2 碳源对茯苓菌细胞生长和茯苓多糖合成的影响 | 第20-21页 |
| 3.3 氮源对茯苓菌细胞生长和茯苓多糖合成的影响 | 第21-22页 |
| 3.4 初始pH对茯苓菌细胞生长和茯苓多糖合成的影响 | 第22-23页 |
| 3.5 金属离子对茯苓菌细胞生长和茯苓多糖合成的影响 | 第23-24页 |
| 3.6 其他辅助因子对茯苓菌细胞生长和茯苓多糖合成的影响 | 第24-25页 |
| 4 讨论与小结 | 第25-26页 |
| 第二节 液态发酵体系茯苓多糖合成过程发酵罐放大研究 | 第26-32页 |
| 1 菌种、仪器与试剂 | 第26-27页 |
| 1.1 实验菌种 | 第26页 |
| 1.2 实验仪器 | 第26页 |
| 1.3 实验试剂 | 第26-27页 |
| 2 实验方法 | 第27-28页 |
| 2.1 菌种活化 | 第27页 |
| 2.2 发酵条件 | 第27页 |
| 2.3 取样与发酵液处理 | 第27页 |
| 2.4 相关分析方法 | 第27-28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-31页 |
| 3.1 生物量随时间的变化 | 第28页 |
| 3.2 胞外多糖随时间的变化 | 第28-29页 |
| 3.3 胞内多糖随时间的变化 | 第29-30页 |
| 3.4 发酵液pH随时间的变化 | 第30页 |
| 3.5 溶氧随时间的变化 | 第30-31页 |
| 4 讨论与小结 | 第31-32页 |
| 第三章 茯苓多糖的体外抗氧化活性研究 | 第32-41页 |
| 1 材料、仪器与试剂 | 第32-33页 |
| 1.1 实验材料 | 第32页 |
| 1.2 实验仪器 | 第32页 |
| 1.3 实验试剂 | 第32-33页 |
| 2 实验方法 | 第33-35页 |
| 2.1 多糖提取方法 | 第33页 |
| 2.2 羟基自由基（·OH）清除能力 | 第33页 |
| 2.3 DPPH自由基清除能力 | 第33-34页 |
| 2.4 超氧阴离子自由基（O_2-·）清除能力 | 第34-35页 |
| 2.5 茯苓多糖的红外光谱分析 | 第35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-39页 |
| 3.1 羟基自由基（·OH）清除能力试验结果 | 第35-36页 |
| 3.2 DPPH自由基清除能力试验结果 | 第36页 |
| 3.3 超氧阴离子自由基（O_2-·）清除能力试验结果 | 第36-37页 |
| 3.4 不同来源茯苓多糖的红外光谱分析 | 第37-39页 |
| 4 讨论与小结 | 第39-41页 |
| 第四章 结论 | 第41-43页 |
| 第五章 展望 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 附录 综述 | 第48-61页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
