| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第1章 综述 | 第11-41页 |
| 1.1 糖尿病的现状及动物模型 | 第11-19页 |
| 1.1.1 糖尿病的现状及危害 | 第11-12页 |
| 1.1.2 糖尿病的动物模型 | 第12-17页 |
| 1.1.3 糖尿病的治疗 | 第17-19页 |
| 1.2 斑马鱼胰腺的早期发育 | 第19-29页 |
| 1.2.1 斑马鱼胰腺的形态建成 | 第19-21页 |
| 1.2.2 胰腺发育过程中的关键调控基因及信号途径 | 第21-29页 |
| 1.3 斑马鱼 β 细胞的发育及再生 | 第29-36页 |
| 1.3.1 胰腺 β 细胞的发育 | 第29-31页 |
| 1.3.2 胰腺 β 细胞的再生 | 第31-36页 |
| 1.4 本文拟定的研究内容及技术路线 | 第36-40页 |
| 1.4.1 本文的主要研究内容 | 第36页 |
| 1.4.2 本文的研究技术路线 | 第36-40页 |
| 1.5 部分缩略语表 | 第40-41页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第41-63页 |
| 2.1 实验动物及其饲养 | 第41-42页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第41-42页 |
| 2.1.2 实验动物饲养条件 | 第42页 |
| 2.2 试剂、耗材和仪器 | 第42-43页 |
| 2.3 菌株和质粒 | 第43页 |
| 2.4 培养基和主要试剂的配制 | 第43-47页 |
| 2.4.1 LB培养基的配制 | 第43-44页 |
| 2.4.2 缓冲液的配制 | 第44页 |
| 2.4.3 胚胎原位杂交相关溶液的配制 | 第44-46页 |
| 2.4.4 抗体显色相关溶液的配制 | 第46页 |
| 2.4.5 其他溶液的配制 | 第46-47页 |
| 2.5 实验方法与步骤 | 第47-63页 |
| 2.5.1 斑马鱼基因组DNA的提取 | 第47页 |
| 2.5.2 斑马鱼总RNA的提取 | 第47-48页 |
| 2.5.3 反转录cDNA的制备 | 第48页 |
| 2.5.4 电转感受态细胞的制备 | 第48-53页 |
| 2.5.6 反义探针的制备 | 第53-54页 |
| 2.5.7 亚克隆连接 | 第54页 |
| 2.5.8 DNA的纯化 | 第54-55页 |
| 2.5.9 胚胎显微注射 | 第55-57页 |
| 2.5.10 Mtz溶液杀伤处理 | 第57-59页 |
| 2.5.11 原位杂交 | 第59-61页 |
| 2.5.12 抗体显色 | 第61-63页 |
| 第3章 实验结果 | 第63-83页 |
| 3.1 引言 | 第63-64页 |
| 3.2 实验结果 | 第64-83页 |
| 3.2.1 转基因斑马鱼系的构建 | 第64-66页 |
| 3.2.2 特异性杀伤后 β 细胞的再生 | 第66-69页 |
| 3.2.3 neurod阳性细胞与 β 细胞再生 | 第69-70页 |
| 3.2.4 pdx1阳性细胞与 β 细胞再生 | 第70-72页 |
| 3.2.5 pdx1，mnx1，nkx2.2a， nkx6.1 与 β 细胞再生 | 第72-77页 |
| 3.2.6 胰腺导管与 β 细胞再生 | 第77-81页 |
| 3.2.7 δ 细胞与 β 细胞再生 | 第81-83页 |
| 第4章 结论与讨论 | 第83-87页 |
| 4.1 结论 | 第83-84页 |
| 4.2 讨论 | 第84-87页 |
| 参考文献 | 第87-113页 |
| 致谢 | 第113-115页 |
| 博士在读期间发表论文及科研工作 | 第115页 |
| 博士在读期间参与的科研工作 | 第115页 |