致谢 | 第6-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
缩略词表 | 第13-15页 |
目录 | 第15-18页 |
1 绪论 | 第18-29页 |
1.1 脱水素的结构特征和功能 | 第18-21页 |
1.1.1 脱水素的结构特征 | 第18-19页 |
1.1.2 脱水素的功能 | 第19-21页 |
1.2 脱水素的组织和亚细胞定位 | 第21-22页 |
1.2.1 脱水素的组织定位 | 第21页 |
1.2.2 脱水素的亚细胞定位 | 第21-22页 |
1.3 脱水素基因的表达 | 第22-25页 |
1.3.1 脱水素基因在低温胁迫下的表达 | 第22-24页 |
1.3.2 脱水素在干旱胁迫下的表达 | 第24-25页 |
1.3.3 脱水素在盐胁迫下的表达 | 第25页 |
1.4 脱水素基因的表达调控机制 | 第25-27页 |
1.5 植物脱水素基因的转基因研究 | 第27页 |
1.6 研究目标与内容 | 第27-29页 |
2 EjDHN基因克隆及表达分析 | 第29-44页 |
2.1 材料和方法 | 第29-32页 |
2.1.1 试验材料 | 第29-30页 |
2.1.2 干旱胁迫和ABA处理 | 第30页 |
2.1.3 总RNA的提取和cDNA的合成 | 第30页 |
2.1.4 基因克隆 | 第30页 |
2.1.5 基因序列分析及同源性分析 | 第30-31页 |
2.1.6 荧光定量PCR分析 | 第31-32页 |
2.2 结果与分析 | 第32-42页 |
2.2.1 EjDNH基因序列分析 | 第32-37页 |
2.2.2 EjDHN基因在不同器官和组织中的表达特征分析 | 第37页 |
2.2.3 EjDHN基因在果实发育过程中的表达 | 第37-39页 |
2.2.4 EjDHN基因在叶片中的季节性表达变化 | 第39-40页 |
2.2.5 EjDHN基因在干旱胁迫下的表达 | 第40-41页 |
2.2.6 EjDHN基因在ABA处理下的表达 | 第41-42页 |
2.3 讨论 | 第42-44页 |
3 EjDHN基因表达与枇杷幼果抗冻能力的关系 | 第44-55页 |
3.1 材料与方法 | 第44-46页 |
3.1.1 试验材料 | 第44页 |
3.1.2 抗冻能力测定 | 第44-45页 |
3.1.3 细胞膜破坏程度测定 | 第45页 |
3.1.4 抗氧化酶活性的测定 | 第45页 |
3.1.5 总RNA提取及cDNA合成 | 第45页 |
3.1.6 基因表达分析 | 第45-46页 |
3.1.7 金标免疫定位 | 第46页 |
3.2 结果与分析 | 第46-53页 |
3.2.1 低温处理过程中不同品种枇杷幼果的生理生化指标变化 | 第46-49页 |
3.2.2 EjDHN基因在低温胁迫下的表达分析 | 第49页 |
3.2.3 金标免疫定位分析 | 第49-53页 |
3.3 讨论 | 第53-55页 |
4 EjDHN1和EjDNH5转基因及其功能验证 | 第55-71页 |
4.1 材料与方法 | 第55-60页 |
4.1.1 载体构建 | 第55-56页 |
4.1.2 农杆菌感受态细胞的制备 | 第56-57页 |
4.1.3 电击法转化农杆菌 | 第57页 |
4.1.4 制备农杆菌侵染液 | 第57页 |
4.1.5 烟草转基因 | 第57-58页 |
4.1.6 T_0代转基因烟草的鉴定 | 第58-59页 |
4.1.7 EjDNH基因株系的表型分析 | 第59-60页 |
4.1.8 叶绿素含量的测定 | 第60页 |
4.1.9 细胞膜破坏程度测定 | 第60页 |
4.1.10 抗氧化酶SOD活性的测定 | 第60页 |
4.2 结果与分析 | 第60-69页 |
4.2.1 EjDHN1和EjDHN5转基因株系的鉴定 | 第60-63页 |
4.2.2 EjDHN1和EJDHN5的超表达提高了烟草的抗低温胁迫能力 | 第63-67页 |
4.2.3 EjDHN1和EjDHN5的超表达提高了烟草的抗氧化胁迫能力 | 第67-69页 |
4.3 讨论 | 第69-71页 |
5 总结与展望 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-85页 |
作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第85页 |