| 前言 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第13-15页 |
| 第1章 绪论 | 第15-35页 |
| 1.1 成体海马神经发生概述 | 第15-16页 |
| 1.2 成体海马神经发生的观念进展 | 第16页 |
| 1.3 齿状回在海马成体神经发生中的作用 | 第16-18页 |
| 1.4 海马神经发生的独特步骤 | 第18-24页 |
| 1.4.1 前体细胞阶段 | 第20-22页 |
| 1.4.2 早期存活阶段 | 第22-23页 |
| 1.4.3 有丝分裂后成熟期 | 第23页 |
| 1.4.4 成熟晚期 | 第23-24页 |
| 1.5 神经发育的控制 | 第24-25页 |
| 1.6 成体海马神经发生的调控与功能的关系 | 第25页 |
| 1.7 衰老与神经干细胞功能 | 第25-27页 |
| 1.7.1 衰老的机体概述 | 第25-26页 |
| 1.7.2 衰老与神经发生的关系 | 第26页 |
| 1.7.3 小生境在衰老NSCs中的调控 | 第26-27页 |
| 1.8 BubR1激酶与过早老化 | 第27-33页 |
| 1.8.1 纺锤体组装检查点 | 第28-29页 |
| 1.8.2 全能型多区域蛋白-BubR1 | 第29-30页 |
| 1.8.3 BubR1动物疾病模型 | 第30-32页 |
| 1.8.4 BubR1和衰老 | 第32-33页 |
| 1.9 本课题立题依据 | 第33-35页 |
| 第2章 材料和方法 | 第35-49页 |
| 2.1 实验动物 | 第35-36页 |
| 2.1.1 实验动物基因型测定 | 第35-36页 |
| 2.1.2 小鼠交配育种方案 | 第36页 |
| 2.2 实验方法 | 第36-49页 |
| 2.2.1 实时定量PCR （q RT-PCR）测定 | 第36-37页 |
| 2.2.2 原位杂交 | 第37-38页 |
| 2.2.3 慢病毒构建 | 第38-40页 |
| 2.2.4 Western Blot | 第40页 |
| 2.2.5 工程化逆转录病毒产物 | 第40-41页 |
| 2.2.6 逆转录病毒立体定向注射手术 | 第41-42页 |
| 2.2.7 脑组织标本固定及切片准备 | 第42-43页 |
| 2.2.8 Brd U标记用于胚胎期神经前体细胞增殖的分析 | 第43页 |
| 2.2.9 Ed U标记用于体内神经细胞增殖和存活的分析 | 第43页 |
| 2.2.10 免疫组化染色 | 第43-46页 |
| 2.2.11 齿状突内各阶段神经细胞共聚焦成像和分析 | 第46页 |
| 2.2.12 神经元树突分析 | 第46-47页 |
| 2.2.13 体外神经元分化分析 | 第47-48页 |
| 2.2.14 统计学方法 | 第48-49页 |
| 第3章 结果 | 第49-63页 |
| 3.1 BubR1对小鼠表型的影响及在齿状突内的表达 | 第49-52页 |
| 3.1.1 BubR1对小鼠表型的影响 | 第49页 |
| 3.1.2 BubR1在齿状突内的表达 | 第49-51页 |
| 3.1.3 BubR1在体外神经元的表达 | 第51-52页 |
| 3.2 BubR1对BubR1H/H成熟小鼠神经前体细胞的影响 | 第52-55页 |
| 3.3 BubR1对BubR1H/H小鼠早期发育阶段神经前体细胞的影响 | 第55-57页 |
| 3.4 BubR1对BubR1H/H小鼠齿状回神经元的影响 | 第57-59页 |
| 3.5 BubR1低表达对小鼠新生神经元树突形态发生的影响 | 第59-63页 |
| 第4章 讨论 | 第63-67页 |
| 第5章 结论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-90页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91页 |
