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耐受镉的电化学活性菌与阴极电子协同作用产氢

摘要第2-3页
Abstract第3-4页
1 绪论第7-17页
    1.1 生物电化学系统第7-13页
        1.1.1 生物阴极产氢第7-12页
        1.1.2 生物阴极去除重金属第12-13页
    1.2 关于Ochrobactrum sp.和Pseudomonas sp.相关介绍第13-16页
    1.3 课题研究目的、意义和内容第16-17页
2 实验材料与方法第17-30页
    2.1 实验材料第17-21页
        2.1.1 实验仪器与试剂第17-19页
        2.1.2 材料与处理第19-20页
        2.1.3 培养基及反应溶液第20-21页
        2.1.4 实验装置第21页
    2.2 分析方法第21-27页
        2.2.1 小分子酸的测定第21页
        2.2.2 胞外多糖浓度的测定第21-22页
        2.2.3 胞外蛋白质浓度的测定第22-23页
        2.2.4 脱氢酶测定第23-24页
        2.2.5 生物量的测定第24页
        2.2.6 氢气测定第24页
        2.2.7 金属浓度测定第24-25页
        2.2.8 SOD,CAT,GSH酶活性测定第25页
        2.2.9 阳极COD测定第25页
        2.2.10 碳酸根测定第25页
        2.2.11 XPS分析第25-26页
        2.2.12 三维荧光激发发射矩阵分析第26页
        2.2.13 循环伏安法分析第26-27页
    2.3 相关计算第27-30页
        2.3.1 电流第27页
        2.3.2 库伦效率第27-28页
        2.3.3 收率第28页
        2.3.4 能量回收效率第28-30页
3 结果与讨论第30-64页
    3.1 离子交换膜对EAB与阴极电子协同作用的影响研究第30-31页
    3.2 运行时间对EAB与阴极电子协同产氢的影响研究第31-42页
        3.2.1 实验设置第31页
        3.2.2 运行时间对氢气生产的影响研究第31-33页
        3.2.3 运行时间对金属去除的影响研究第33-34页
        3.2.4 运行时间对乙酸生产的影响研究第34-35页
        3.2.5 运行时间对电流的影响研究第35-38页
        3.2.6 运行时间对胞外多糖与胞外蛋白的影响研究第38-39页
        3.2.7 XPS价态分析第39-42页
        3.2.8 碳消耗分析第42页
    3.3 Cd(Ⅱ)初始浓度对EAB与阴极电子协同产氢的影响研究及机理分析第42-62页
        3.3.1 实验设置第42页
        3.3.2 Cd(Ⅱ)初始浓度对EAB与阴极电子协同产氢的影响研究第42-46页
        3.3.3 Cd(Ⅱ)初始浓度对生物量与EPS的影响研究第46-47页
        3.3.4 Cd(Ⅱ)初始浓度对脱氢酶的影响研究第47-48页
        3.3.5 EPS对EAB与阴极电子协同作用产氢的影响研究第48-49页
        3.3.6 Cd(Ⅱ)初始浓度对SOD,CAT,GSH的影响研究第49-53页
        3.3.7 荧光光谱表征分析第53-58页
        3.3.8 循环伏安曲线分析第58-62页
    3.4 生物活性对EAB与阴极电子协同产氢的影响研究第62-64页
结论第64-65页
参考文献第65-72页
攻读硕士学位期间发表学术论文情况第72-73页
致谢第73-75页

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