| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 胆固醇酯转运蛋白基因rs708272多态性的研究进展 | 第11-23页 |
| 1.1 内含子的定义及位置 | 第11-12页 |
| 1.2 内含子的分类 | 第12-13页 |
| 1.3 内含子在基因表达调控中的作用 | 第13-14页 |
| 1.3.1 内含子对基因表达的正调控作用 | 第13-14页 |
| 1.3.2 内含子对基因表达的负调控作用 | 第14页 |
| 1.4 内含子多态性的研究现状 | 第14-15页 |
| 1.5 CETP基因的结构和功能 | 第15-18页 |
| 1.6 CETP基因多态位点 | 第18-20页 |
| 1.7 CETP基因rs708272多态性研究现状 | 第20-22页 |
| 1.8 小结 | 第22-23页 |
| 2 研究对象与方法 | 第23-42页 |
| 2.1 研究对象 | 第23页 |
| 2.2 训练计划 | 第23页 |
| 2.3 测试指标 | 第23页 |
| 2.4 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.5 主要试剂配制 | 第24-25页 |
| 2.6 菌株和细胞株 | 第25页 |
| 2.7 主要仪器 | 第25-26页 |
| 2.8 基因提取及分型 | 第26-28页 |
| 2.8.1 基因组提取 | 第26-27页 |
| 2.8.2 胆固醇酯转运蛋白rs708272位点多态性分析 | 第27-28页 |
| 2.9 胆固醇酯转运蛋白rs708272位点的功能分析 | 第28-42页 |
| 2.9.1 CETP基因第一内含子序列扩增 | 第28-30页 |
| 2.9.2 CETP基因rs708272位点突变 | 第30-33页 |
| 2.9.3 双酶切 | 第33-34页 |
| 2.9.4 目的片段与表达载体连接 | 第34页 |
| 2.9.5 连接产物的转化 | 第34-35页 |
| 2.9.6 重组质粒的提取与鉴定 | 第35-36页 |
| 2.9.7 细胞培养 | 第36-37页 |
| 2.9.8 细胞转染 | 第37-41页 |
| 2.9.9 双荧光素酶报告基因表达检测 | 第41-42页 |
| 2.10 统计学分析 | 第42页 |
| 3 结果 | 第42-56页 |
| 3.1 CETP基因rs708272多态性与减脂训练效果的关联性 | 第42-48页 |
| 3.1.1 CETP基因rs708272位点PCR扩增结果 | 第42-43页 |
| 3.1.2 CETP基因rs708272位点分型结果 | 第43-44页 |
| 3.1.3 CETP基因rs708272多态性分布特征 | 第44页 |
| 3.1.4 CETP基因rs708272多态性与TC、TG、LDL-C、HDL-C的关联性 | 第44-48页 |
| 3.2 CETP基因rs708272位点的功能研究结果 | 第48-56页 |
| 3.2.1 CETP基因第一内含子的扩增结果 | 第48-49页 |
| 3.2.2 CETP基因rs708272位点突变结果 | 第49-51页 |
| 3.2.3 双酶切结果 | 第51-52页 |
| 3.2.4 重组质粒的鉴定 | 第52-53页 |
| 3.2.5 细胞转染 | 第53-55页 |
| 3.2.6 双荧光素酶报告基因表达活性检测 | 第55-56页 |
| 4 分析与讨论 | 第56-61页 |
| 4.1 CETP基因rs708272多态性的分布特征 | 第56-57页 |
| 4.2 CETP基因rs708272多态性与运动减脂训练敏感性的关联分析 | 第57-59页 |
| 4.3 内含子的调控功能 | 第59-60页 |
| 4.4 不同等位基因调控功能的差异 | 第60-61页 |
| 5 结论 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-72页 |
| 附录 | 第72-77页 |
| 1 中英文对照表 | 第72-73页 |
| 2 训练计划 | 第73-74页 |
| 3 食谱 | 第74-75页 |
| 4 知情同意书 | 第75-77页 |
| 个人简历 在读期间发表的学术论文与研究成果 | 第77页 |
