| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第11-21页 |
| 1.1 针对MDA-MB-231细胞的抗癌物质的研究进展 | 第11-14页 |
| 1.1.1 人工合成类化合物 | 第11-12页 |
| 1.1.2 植物提取物 | 第12-13页 |
| 1.1.3 动物提取物 | 第13页 |
| 1.1.4 菌类提取物 | 第13-14页 |
| 1.1.5 微生物 | 第14页 |
| 1.2 红曲发酵产物抗癌作用 | 第14-15页 |
| 1.3 红曲发酵产物抗癌机制 | 第15-18页 |
| 1.3.1 抑制细胞增殖和细胞周期阻滞机制 | 第15-16页 |
| 1.3.2 诱导细胞凋亡、自噬 | 第16页 |
| 1.3.3 抑制迁移和侵袭 | 第16-17页 |
| 1.3.4 诱导分化 | 第17页 |
| 1.3.5 抑制血管生成活性 | 第17-18页 |
| 1.3.6 抑制炎症和氧化应激 | 第18页 |
| 1.4 抗体蛋白芯片技术 | 第18-19页 |
| 1.5 本课题研究目的、意义和主要内容 | 第19-21页 |
| 1.5.1 本课题研究目的与意义 | 第19页 |
| 1.5.2 本课题研究主要内容 | 第19-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.2 实验器材 | 第22-23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-33页 |
| 2.2.1 主要试剂配制 | 第23-24页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第24-25页 |
| 2.2.3 MTS细胞活性实验 | 第25页 |
| 2.2.4 流式细胞仪测细胞凋亡 | 第25-26页 |
| 2.2.5 Hoechst 33258染色 | 第26-27页 |
| 2.2.6 HE染色 | 第27页 |
| 2.2.7 划痕实验 | 第27页 |
| 2.2.8 Transwell侵袭实验 | 第27-28页 |
| 2.2.9 Springbio高通量抗体芯片 | 第28-30页 |
| 2.2.10 RT-qPCR测定基因表达水平 | 第30-33页 |
| 2.3 统计学分析 | 第33-34页 |
| 3 实验结果 | 第34-52页 |
| 3.1 红曲色素对MDA-MB-231细胞增殖的影响 | 第34页 |
| 3.2 红曲色素对MDA-MB-231细胞凋亡的影响 | 第34-37页 |
| 3.3 红曲色素对MDA-MB-231细胞形态的影响 | 第37页 |
| 3.4 细胞细胞运动能力的影响 | 第37-40页 |
| 3.4.1 红曲色素对MDA-MB-231细胞迁移能力的影响 | 第37-39页 |
| 3.4.2 红曲色素对MDA-MB-231细胞侵袭能力的影响 | 第39-40页 |
| 3.5 红曲色素对MDA-MB-231细胞的机理初步研究 | 第40-44页 |
| 3.5.1 蛋白含量检测 | 第40-41页 |
| 3.5.2 不同处理组的蛋白芯片排布 | 第41页 |
| 3.5.3 红曲色素对MDA-MB-231细胞蛋白表达的影响 | 第41-44页 |
| 3.6 红曲色素对MDA-MB-231细胞蛋白生理功能的影响 | 第44-45页 |
| 3.7 红曲色素对MDA-MB-231细胞基因KRT 19、TYMP和CD44 mRNA表达的影响 | 第45-49页 |
| 3.7.1 RNA纯度检测和完整性测定 | 第45-46页 |
| 3.7.2 β-actin、KRT 19、TYMP和CD44的扩增曲线和溶解曲线 | 第46-47页 |
| 3.7.3 Real-time PCR检测相关基因KRT 19、TYMP和CD44 mRNA相对表达量 | 第47-49页 |
| 3.8 红曲色素对MDA-MB-231细胞的通路影响 | 第49-52页 |
| 4 讨论 | 第52-56页 |
| 5 结论 | 第56-58页 |
| 创新点 | 第58-59页 |
| 展望 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 附录A | 第69-70页 |
| 附录B 缩写词及中英文对照 | 第70-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
