| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-24页 |
| 1. 蛹虫草概述 | 第14页 |
| 2. 蛹虫草的人工栽培 | 第14-15页 |
| 2.1 虫草菌丝体液体发酵 | 第14-15页 |
| 2.2 虫草子实体固体发酵 | 第15页 |
| 3. 食用菌保鲜技术 | 第15-18页 |
| 3.1 低温保鲜食用菌 | 第15-16页 |
| 3.2 气调保鲜食用菌 | 第16页 |
| 3.3 辐照保鲜食用菌 | 第16页 |
| 3.4 臭氧保鲜食用菌 | 第16-17页 |
| 3.5 涂膜保鲜食用菌 | 第17页 |
| 3.6 其他保鲜技术 | 第17-18页 |
| 4. 食用菌常用干燥技术 | 第18-20页 |
| 4.1 自然晒干 | 第18页 |
| 4.2 热风干燥 | 第18-19页 |
| 4.3 微波干燥 | 第19页 |
| 4.4 真空冷冻干燥 | 第19-20页 |
| 5. 多糖重金属吸附的研究 | 第20-22页 |
| 5.1 重金属吸附的研究现状 | 第20页 |
| 5.2 多糖提取的研究进展 | 第20-21页 |
| 5.3 提取的动力学模型研究 | 第21-22页 |
| 6. 本课题研究的主要意义和内容 | 第22-24页 |
| 6.1 本课题研究的主要意义 | 第22页 |
| 6.2 本课题研究的主要内容 | 第22-24页 |
| 第二章 异硫氰酸烯丙酯处理对蛹虫草采后品质的影响 | 第24-45页 |
| 1. 材料与方法 | 第24-30页 |
| 1.1 试剂和仪器 | 第24-25页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第24-25页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第25页 |
| 1.2 材料处理 | 第25-26页 |
| 1.3 感官品质的测定 | 第26页 |
| 1.3.1 腐烂程度的测定 | 第26页 |
| 1.3.2 色泽的测定 | 第26页 |
| 1.4 活性成分含量的测定 | 第26-28页 |
| 1.4.1 多糖含量的测定 | 第26页 |
| 1.4.2 虫草素含量的测定 | 第26-27页 |
| 1.4.3 胡萝卜素含量的测定 | 第27页 |
| 1.4.4 黄酮含量的测定 | 第27-28页 |
| 1.4.5 总酚含量的测定 | 第28页 |
| 1.5 酶活性及MDA含量的测定 | 第28-29页 |
| 1.5.1 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第28页 |
| 1.5.2 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第28-29页 |
| 1.5.3 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第29页 |
| 1.5.4 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第29页 |
| 1.6 蛹虫草子实体抗氧化能力的测定 | 第29-30页 |
| 1.6.1 FRAP法测蛹虫草子实体抗氧化能力 | 第29页 |
| 1.6.2 蛹虫草子实体清除DPPH自由基活性的测定 | 第29-30页 |
| 1.6.3 蛹虫草子实体ABTS自由基清除能力的检测 | 第30页 |
| 1.6.4 蛹虫草子实体对超氧阴离子清除能力的测定 | 第30页 |
| 2. 结果与分析 | 第30-43页 |
| 2.1 AITC处理对蛹虫草腐烂程度的影响 | 第30-31页 |
| 2.2 AITC处理对蛹虫草色泽的影响 | 第31-32页 |
| 2.3 AITC处理对蛹虫草多糖含量的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第32页 |
| 2.3.2 AITC处理对贮藏期蛹虫草多糖含量的影响 | 第32-33页 |
| 2.4 AITC处理对蛹虫草虫草素含量的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.1 虫草素标准曲线 | 第33页 |
| 2.4.2 AITC处理对贮藏期蛹虫草虫草素含量的影响 | 第33-34页 |
| 2.5 AITC处理对蛹虫草胡萝卜素含量的影响 | 第34-35页 |
| 2.5.1 胡萝卜素含量的标准曲线 | 第34-35页 |
| 2.5.2 AITC处理对贮藏期蛹虫草类胡萝卜素含量的影响 | 第35页 |
| 2.6 AITC处理对蛹虫草黄酮含量的影响 | 第35-37页 |
| 2.6.1 黄酮含量的标准曲线 | 第35-36页 |
| 2.6.2 AITC处理对贮藏期蛹虫草黄酮含量的影响 | 第36-37页 |
| 2.7 AITC处理对蛹虫草总酚含量的影响 | 第37-38页 |
| 2.7.1 总酚含量的标准曲线 | 第37页 |
| 2.7.2 AITC处理对贮藏期蛹虫草总酚含量的影响 | 第37-38页 |
| 2.8 AITC处理对蛹虫草SOD酶活的影响 | 第38-39页 |
| 2.9 AITC处理对蛹虫草CAT酶活的影响 | 第39-40页 |
| 2.10 AITC处理对蛹虫草POD酶活的影响 | 第40-41页 |
| 2.11 AITC处理对蛹虫草MDA含量的影响 | 第41-42页 |
| 2.12 AITC处理对蛹虫草抗氧化活性的影响 | 第42-43页 |
| 3. 讨论 | 第43-44页 |
| 4. 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 不同干燥方式对蛹虫草抗氧化成分及活性的影响 | 第45-55页 |
| 1. 材料与方法 | 第45-47页 |
| 1.1 试剂和仪器 | 第45页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第45页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第45页 |
| 1.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 1.2.1 样品的干燥方法 | 第45-46页 |
| 1.2.2 含水量的测定 | 第46页 |
| 1.2.3 色泽的测定 | 第46页 |
| 1.2.4 复水率的测定 | 第46页 |
| 1.2.5 多糖含量的测定 | 第46页 |
| 1.2.6 虫草素含量的测定 | 第46页 |
| 1.2.7 胡萝卜素含量的测定 | 第46页 |
| 1.2.8 黄酮含量的测定 | 第46页 |
| 1.2.9 总酚含量的测定 | 第46页 |
| 1.2.10 抗氧化活性 | 第46-47页 |
| 1.2.11 数据统计分析 | 第47页 |
| 2. 结果与分析 | 第47-53页 |
| 2.1 不同干燥方式对蛹虫草干制品含水量和复水率的影响 | 第47页 |
| 2.2 不同干燥方式对蛹虫草色泽的影响 | 第47-49页 |
| 2.3 不同干燥方式对蛹虫草主要成分含量的影响 | 第49-50页 |
| 2.4 不同干燥方式对蛹虫草抗氧化活性的影响 | 第50-53页 |
| 2.4.1 FRAP法测蛹虫草子实体抗氧化能力 | 第50-51页 |
| 2.4.2 蛹虫草子实体清除DPPH自由基能力 | 第51-52页 |
| 2.4.3 蛹虫草子实体清除ABTS自由基能力 | 第52页 |
| 2.4.4 蛹虫草子实体对超氧阴离子清除能力的影响 | 第52-53页 |
| 3. 讨论 | 第53-54页 |
| 4. 本章小结 | 第54-55页 |
| 第四章 虫草多糖的酶法提取和重金属Pb(Ⅱ)吸附的研究 | 第55-69页 |
| 1. 材料与方法 | 第55-57页 |
| 1.1 材料 | 第55-56页 |
| 1.1.1 菌株 | 第55页 |
| 1.1.2 培养基 | 第55页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第55页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第55-56页 |
| 1.2 实验方法 | 第56-57页 |
| 1.2.1 菌丝体的制备 | 第56页 |
| 1.2.2 单因素酶法辅助提取多糖 | 第56页 |
| 1.2.3 多糖提取的正交试验设计 | 第56页 |
| 1.2.4 多糖的脱蛋白 | 第56-57页 |
| 1.2.5 虫草多糖吸附Pb(Ⅱ)试验 | 第57页 |
| 1.2.6 吸附动力学研究 | 第57页 |
| 1.2.7 吸附热力学研究 | 第57页 |
| 1.2.8 扫描电镜分析 | 第57页 |
| 1.2.9 红外光谱分析 | 第57页 |
| 2. 结果分析 | 第57-68页 |
| 2.1 单因素纤维素酶提取虫草多糖 | 第57-68页 |
| 2.1.1 酶提前后的电镜扫描 | 第57-58页 |
| 2.1.2 单因素优化酶法多糖的提取 | 第58-59页 |
| 2.1.3 酶法提取多糖的动力学模型研究 | 第59-61页 |
| 2.1.4 多糖提取的正交试验 | 第61-62页 |
| 2.1.5 虫草多糖Pb(Ⅱ)的吸附 | 第62-67页 |
| 2.1.6 红外光谱分析 | 第67-68页 |
| 3. 讨论 | 第68页 |
| 4. 本章小结 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 附录A 中英文对照及英文缩写词表 | 第76-77页 |
| 附录B 图形索引 | 第77-80页 |
| 附录C 表格索引 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第82页 |
