| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第11-22页 |
| 1.1 奶牛乳房炎 | 第11页 |
| 1.2 奶牛乳房炎的分类 | 第11-12页 |
| 1.2.1 传染性乳房炎 | 第11页 |
| 1.2.2 环境性乳房炎 | 第11页 |
| 1.2.3 凝固酶阴性葡萄球菌乳房炎 | 第11-12页 |
| 1.3 奶牛乳房炎的检测 | 第12-13页 |
| 1.3.1 临床检测法 | 第12页 |
| 1.3.2 乳汁的病原微生物检验 | 第12页 |
| 1.3.3 乳汁体细胞直接检测法 | 第12页 |
| 1.3.4 乳汁体细胞间接检测法 | 第12-13页 |
| 1.3.5 乳汁理化性质的检测 | 第13页 |
| 1.4 奶牛乳房炎的防治 | 第13页 |
| 1.4.1 加强日常管理 | 第13页 |
| 1.4.2 药物治疗 | 第13页 |
| 1.4.3 疫苗治疗 | 第13页 |
| 1.5 金黄色葡萄球菌的概述 | 第13-15页 |
| 1.5.1 金黄色葡萄球菌的毒力因子及特性 | 第13-15页 |
| 1.5.2 金黄色葡萄球菌的致病机理 | 第15页 |
| 1.6 生物被膜的研究进展 | 第15-19页 |
| 1.6.1 生物被膜的概述 | 第15-17页 |
| 1.6.2 金黄色葡萄球菌生物被膜产生的调控机制的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.6.3 细菌生物被膜的耐药机制 | 第18-19页 |
| 1.7 金黄色葡萄球菌荚膜多糖的概况 | 第19-20页 |
| 1.7.1 荚膜多糖的概述及血清型 | 第19页 |
| 1.7.2 荚膜多糖的免疫原性 | 第19-20页 |
| 1.8 ELISA检测抗体水平 | 第20页 |
| 1.9 本研究的意义及技术设计 | 第20-22页 |
| 1.9.1 本研究的意义 | 第20-21页 |
| 1.9.2 技术设计 | 第21-22页 |
| 2 奶牛乳房炎病原菌的分离与鉴定及金黄色葡萄球菌生物被膜的检测 | 第22-30页 |
| 2.1 试验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 主要培养基与试剂 | 第22页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第22页 |
| 2.1.3 乳样采集 | 第22-23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-25页 |
| 2.2.0 培养基的制备 | 第23页 |
| 2.2.1 细菌的分离培养 | 第23页 |
| 2.2.2 葡萄球菌的API Staph鉴定 | 第23-24页 |
| 2.2.3 生物被膜的定性检测 | 第24页 |
| 2.2.4 生物被膜的定量试验 | 第24-25页 |
| 2.3 试验结果 | 第25-29页 |
| 2.3.1 细菌的分离鉴定结果 | 第25页 |
| 2.3.2 葡萄球菌API Staph鉴定结果 | 第25-26页 |
| 2.3.3 生物被膜的定性检测结果 | 第26-27页 |
| 2.3.4 生物被膜的定量测定结果 | 第27-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-30页 |
| 2.4.1 奶牛乳房炎病原菌的分离与鉴定 | 第29页 |
| 2.4.2 金黄色葡萄球菌生物被膜阳性菌及产生能力的筛选 | 第29-30页 |
| 3 金黄色葡萄球菌被膜菌与浮游菌的耐药性分析 | 第30-33页 |
| 3.1 试验材料 | 第30页 |
| 3.1.1 菌种 | 第30页 |
| 3.1.2 培养基及主要试剂 | 第30页 |
| 3.2 试验方法 | 第30-31页 |
| 3.3 试验结果 | 第31页 |
| 3.4 讨论 | 第31-33页 |
| 4 金黄色葡萄球菌8型荚膜多糖的提取 | 第33-40页 |
| 4.1 试验材料 | 第33-34页 |
| 4.1.1 菌种 | 第33页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第33页 |
| 4.1.3 主要仪器和耗材 | 第33-34页 |
| 4.2 试验方法 | 第34-36页 |
| 4.2.1 金黄色葡萄球菌的培养 | 第34页 |
| 4.2.2 荚膜多糖的粗提 | 第34页 |
| 4.2.3 荚膜多糖粗提物中多糖含量的检测 | 第34-35页 |
| 4.2.4 荚膜多糖的纯化 | 第35-36页 |
| 4.3 试验结果 | 第36-39页 |
| 4.3.1 金黄色葡萄球菌的培养 | 第36-37页 |
| 4.3.2 荚膜多糖的粗提 | 第37页 |
| 4.3.3 荚膜多糖粗提物含量的测定 | 第37-38页 |
| 4.3.4 荚膜多糖的纯化 | 第38页 |
| 4.3.5 精制荚膜多糖中核酸及蛋白含量测定 | 第38-39页 |
| 4.4 讨论 | 第39-40页 |
| 5 金黄色葡萄球菌荚膜多糖与生物被膜相关性的探索 | 第40-46页 |
| 5.1 试验材料 | 第40页 |
| 5.1.1 主要试剂 | 第40页 |
| 5.1.2 试验仪器及耗材 | 第40页 |
| 5.2 试验方法 | 第40-42页 |
| 5.2.1 金黄色葡萄球菌8型荚膜多糖与牛血清白蛋白的偶联 | 第40-41页 |
| 5.2.2 金黄色葡萄球菌CP8抗体的制备 | 第41页 |
| 5.2.3 清中CP8抗体测定及CP8与生物被膜相关性检测 | 第41-42页 |
| 5.2.4 吞噬调理试验 | 第42页 |
| 5.3 试验结果 | 第42-45页 |
| 5.3.1 CP8-BSA偶联物紫外扫描图 | 第42-43页 |
| 5.3.2 兔血清中抗体水平的检测结果 | 第43-44页 |
| 5.3.3 生物被膜与荚膜多糖相关性检测结果 | 第44页 |
| 5.3.4 吞噬调理试验结果 | 第44-45页 |
| 5.4 讨论 | 第45-46页 |
| 6 结论 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 作者简介 | 第52页 |
