| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-25页 |
| 1 植物启动子的研究进展 | 第12-19页 |
| ·植物启动子的基本结构 | 第12-14页 |
| ·转录起始位点 | 第12-13页 |
| ·TATA 框 | 第13页 |
| ·CAAT-box | 第13页 |
| ·5' 端上游调控元件 | 第13-14页 |
| ·植物启动子的分类 | 第14-19页 |
| ·组成型启动子 | 第14页 |
| ·组织或器官特异型启动子 | 第14-17页 |
| ·根特异性启动子 | 第15页 |
| ·茎特异性启动子 | 第15-16页 |
| ·叶特异性启动子 | 第16页 |
| ·花特异性启动子 | 第16-17页 |
| ·果实、种子特异性启动子 | 第17页 |
| ·诱导型启动子 | 第17-19页 |
| ·物理因素诱导的启动子 | 第18页 |
| ·化学因素诱导的启动子 | 第18-19页 |
| ·生物因素诱导的启动子 | 第19页 |
| 2 锚蛋白 | 第19-22页 |
| ·锚蛋白结构特点 | 第19-20页 |
| ·植物中的锚蛋白 | 第20-22页 |
| ·锚蛋白参与防御反应 | 第20-21页 |
| ·锚蛋白参与生长发育、物质运输等调控 | 第21-22页 |
| 3 稻瘟病及其抗病基因的研究进展 | 第22-24页 |
| ·稻瘟病 | 第22-23页 |
| ·抗稻瘟病基因 Pita 的遗传定位与克隆 | 第23-24页 |
| 4 本研究的意义 | 第24-25页 |
| 第二章 水稻锚蛋白基因启动子的表达分析 | 第25-39页 |
| ·材料和方法 | 第25-27页 |
| ·实验材料 | 第25页 |
| ·水稻基因组DNA 的提取 | 第25页 |
| ·水稻锚蛋白基因启动子片段的克隆 | 第25页 |
| ·植物表达载体的构建 | 第25-26页 |
| ·农杆菌介导的水稻的遗传转化 | 第26页 |
| ·转基因水稻DNA 的提取以及分子检测 | 第26页 |
| ·G US 组织化学检测 | 第26页 |
| ·OsANKp::GUS 诱导表达研究 | 第26-27页 |
| ·转基因植株的机械损伤处理 | 第26页 |
| ·转基因植株的稻纵卷叶螟幼虫取食处理 | 第26页 |
| ·转基因植株的稻瘟病处理 | 第26-27页 |
| ·结果和分析 | 第27-35页 |
| ·OsANKp 克隆与表达载体构建 | 第27页 |
| ·启动子序列分析 | 第27-30页 |
| ·转基因植株的获得与PCR 鉴定 | 第30-32页 |
| ·农杆菌介导的水稻的遗传转化 | 第30-32页 |
| ·转基因植株的PCR 鉴定 | 第32页 |
| ·转基因植株不同组织中的GUS 活性 | 第32-33页 |
| ·OsANKp 的诱导表达 | 第33-35页 |
| ·T1 代转基因植株机械损伤处理 | 第33-34页 |
| ·T1 代转基因植株稻纵卷叶螟幼虫取食处理 | 第34-35页 |
| ·T1 代转基因植株稻瘟病处理 | 第35页 |
| ·讨论 | 第35-37页 |
| ·启动子片段的序列分析 | 第35-36页 |
| ·转基因植株中的组织器官特异表达 | 第36-37页 |
| ·锚蛋白基因启动子诱导表达的研究 | 第37页 |
| ·小结 | 第37-39页 |
| 第三章 水稻pita 基因启动子的表达分析 | 第39-59页 |
| ·材料和方法 | 第39-43页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·水稻基因组DNA 的提取 | 第39页 |
| ·水稻pita 基因启动子片段的克隆 | 第39页 |
| ·植物表达载体的构建 | 第39页 |
| ·农杆菌介导的水稻的遗传转化 | 第39页 |
| ·转基因水稻DNA 的提取以及分子检测 | 第39-40页 |
| ·GUS 组织化学检测 | 第40页 |
| ·GUS 酶活性的定量检测 | 第40-42页 |
| ·BSA 标准曲线测定 | 第40-41页 |
| ·蛋白提取及测定 | 第41页 |
| ·对硝基苯酚标准曲线的测定 | 第41-42页 |
| ·OsPITA p::GUS 诱导表达研究 | 第42-43页 |
| ·转基因植株的小分子化合物处理 | 第42页 |
| ·转基因植株的生物胁迫处理 | 第42页 |
| ·转基因植株的激素处理 | 第42-43页 |
| ·转基因植株的高温、低温和伤处理 | 第43页 |
| ·结果和分析 | 第43-54页 |
| ·OsPITAp 克隆与表达载体构建 | 第43页 |
| ·启动子序列分析 | 第43-47页 |
| ·转基因植株的获得与PCR 鉴定 | 第47-48页 |
| ·农杆菌介导的水稻的遗传转化 | 第47-48页 |
| ·转基因植株的PCR 鉴定 | 第48页 |
| ·转基因植株不同组织中的GUS 活性 | 第48页 |
| ·T1 代转基因植株幼苗小分子处理 | 第48-49页 |
| ·T1 代转基因植株机械损伤处理 | 第49-50页 |
| ·T1 代转基因植株稻瘟病处理 | 第50页 |
| ·OsPITA p::GUS 的诱导表达 | 第50-52页 |
| ·BSA 蛋白质标准曲线 | 第50-51页 |
| ·对硝基苯酚标准曲线 | 第51-52页 |
| ·T1 转基因植株各种处理后GUS 定量检测 | 第52-54页 |
| ·激素处理后GUS 定量检测 | 第52-53页 |
| ·高温、低温、盐处理后GUS 定量检测 | 第53-54页 |
| ·讨论 | 第54-57页 |
| ·启动子片段的序列分析 | 第54-55页 |
| ·OsPITA p::GUS 转基因植株中的组织器官表达 | 第55页 |
| ·OsPITA p::GUS 诱导表达的研究 | 第55-57页 |
| ·小结 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-68页 |
| 附录 | 第68-77页 |
| 附录1 简易法小量提取基因组DNA | 第68-69页 |
| 附录2 缩略词及英汉对照 | 第69-70页 |
| 附录3 主要实验仪器和试剂盒 | 第70-71页 |
| 附录4 培养基的配方 | 第71-75页 |
| 附录5 本文中涉及的质粒 | 第75-76页 |
| 附录6 DNA Marker 示意图 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |