| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-31页 |
| 1.1 葡萄果实花色苷研究进展 | 第14-24页 |
| 1.1.1 花色苷的结构与功能 | 第14-16页 |
| 1.1.2 葡萄花色苷生物合成途径 | 第16-18页 |
| 1.1.3 编码花色苷合成途径相关酶的基因 | 第18-22页 |
| 1.1.4 影响葡萄花色苷合成的因素 | 第22-24页 |
| 1.2 葡萄果皮颜色变异研究进展 | 第24-27页 |
| 1.2.1 控制葡萄果实颜色的遗传机理 | 第24-25页 |
| 1.2.2 葡萄果实颜色相关的研究方法 | 第25-27页 |
| 1.3 刺葡萄研究进展 | 第27-29页 |
| 1.3.1 刺葡萄的分布及多样性 | 第27-28页 |
| 1.3.2 刺葡萄的特性 | 第28页 |
| 1.3.3 刺葡萄的应用研究 | 第28-29页 |
| 1.4 本研究介绍 | 第29-31页 |
| 1.4.1 目的意义 | 第29页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第29页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第29-31页 |
| 第二章 刺葡萄不同株系亲缘关系分析 | 第31-44页 |
| 2.1 试验材料 | 第31-33页 |
| 2.1.1 供试葡萄样品 | 第31-32页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第32-33页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第33页 |
| 2.2 试验方法 | 第33-34页 |
| 2.2.1 基因组DNA提取 | 第33页 |
| 2.2.2 SSR引物合成与筛选 | 第33页 |
| 2.2.3 白刺葡萄种内亲缘关系分析 | 第33-34页 |
| 2.2.4 形态学表型鉴定 | 第34页 |
| 2.2.5 荧光标记SSR毛细管电泳检测 | 第34页 |
| 2.3 结果与分析 | 第34-42页 |
| 2.3.1 PCR体系优化与引物筛选 | 第34-38页 |
| 2.3.2 白刺葡萄亲缘关系聚类分析 | 第38-40页 |
| 2.3.3 白刺葡萄与湖南刺形态学鉴定 | 第40-41页 |
| 2.3.4 白刺葡萄与湖南刺荧光标记SSR毛细管电泳检测 | 第41-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-43页 |
| 2.4.1 白刺葡萄株系与刺葡萄种群的关系 | 第42页 |
| 2.4.2 白刺葡萄与湖南刺的亲缘关系 | 第42-43页 |
| 2.5 小结 | 第43-44页 |
| 第三章 葡萄果实发育期间花色苷及其相关物质的变化 | 第44-80页 |
| 3.1 试验材料 | 第44-45页 |
| 3.1.1 样品采集 | 第44页 |
| 3.1.2 主要设备 | 第44-45页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第45页 |
| 3.2 试验方法 | 第45-47页 |
| 3.2.1 葡萄果实花色苷及酚类提取 | 第45页 |
| 3.2.2 花色苷及酚类物质HPLC-ESI-MS/MS检测 | 第45-46页 |
| 3.2.3 葡萄果实糖酸提取 | 第46页 |
| 3.2.4 葡萄果实糖HPLC检测 | 第46页 |
| 3.2.5 葡萄果实酸HPLC检测 | 第46页 |
| 3.2.6 抗氧化能力检测 | 第46-47页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第47页 |
| 3.3 结果与分析 | 第47-77页 |
| 3.3.1 葡萄果实生长曲线建立 | 第47-48页 |
| 3.3.2 葡萄果实发育期间花色苷变化 | 第48-57页 |
| 3.3.3 花色苷主成分分析 | 第57-58页 |
| 3.3.4 葡萄果实酚类物质变化 | 第58-69页 |
| 3.3.5 葡萄果实生长发育期间的糖变化 | 第69-71页 |
| 3.3.6 葡萄果实发育期间有机酸的变化 | 第71-73页 |
| 3.3.7 葡萄果实发育期间抗氧化能力变化 | 第73-77页 |
| 3.4 讨论 | 第77-78页 |
| 3.4.1 花色苷组分及含量对葡萄果实颜色的影响 | 第77-78页 |
| 3.4.2 酚类与糖、酸等物质对花色苷的影响 | 第78页 |
| 3.4.3 葡萄果实花色苷与抗氧化能力的关系 | 第78页 |
| 3.5 小结 | 第78-80页 |
| 第四章 不同颜色刺葡萄Myb A1基因型分析 | 第80-91页 |
| 4.1 试验材料 | 第80页 |
| 4.1.1 葡萄材料 | 第80页 |
| 4.1.2 主要试剂及耗材 | 第80页 |
| 4.2 试验方法 | 第80-81页 |
| 4.2.1 基因组DNA提取 | 第80页 |
| 4.2.2 Myb A1基因引物设计 | 第80-81页 |
| 4.2.3 PCR反应体系 | 第81页 |
| 4.2.4 Myb A1基因克隆测序 | 第81页 |
| 4.2.5 形态学鉴定 | 第81页 |
| 4.3 结果与分析 | 第81-89页 |
| 4.3.1 白刺葡萄与湖南刺Myb A1基因型分析 | 第81-86页 |
| 4.3.2 刺葡萄资源的Myb A1基因型分析 | 第86-87页 |
| 4.3.3 刺葡萄杂交后代Myb A1检测 | 第87-89页 |
| 4.4 讨论 | 第89-90页 |
| 4.4.1 白刺葡萄果实颜色变异与Myb A1基因型的关系 | 第89-90页 |
| 4.4.2 中国野生刺葡萄中Gret1的来源 | 第90页 |
| 4.5 小结 | 第90-91页 |
| 第五章 白刺葡萄与湖南刺果皮转录组分析 | 第91-113页 |
| 5.1 试验材料 | 第91页 |
| 5.2 试验方法 | 第91-92页 |
| 5.2.1 转录组测序 | 第91页 |
| 5.2.2 基因功能注释 | 第91-92页 |
| 5.2.3 花色苷合成相关基因实时荧光定量PCR检测(q-RT-PCR) | 第92页 |
| 5.2.4 基因表达与花色苷含量相关性分析 | 第92页 |
| 5.3 结果与分析 | 第92-111页 |
| 5.3.1 测序数据质量评判 | 第92-93页 |
| 5.3.2 刺葡萄果实发育期转录水平差异基因筛选 | 第93-97页 |
| 5.3.3 花色苷合成相关基因表达验证分析 | 第97-104页 |
| 5.3.4 花色苷含量与其合成相关基因表达量的相关性分析 | 第104-111页 |
| 5.4 讨论 | 第111-112页 |
| 5.4.1 转录组分析对白刺葡萄与湖南刺关系的验证 | 第111页 |
| 5.4.2 花色苷合成相关基因的表达与刺葡萄颜色变异的关系 | 第111-112页 |
| 5.5 小结 | 第112-113页 |
| 第六章 全文总结 | 第113-115页 |
| 6.1 结论 | 第113页 |
| 6.2 创新点 | 第113-114页 |
| 6.3 展望 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-129页 |
| 缩略语与中英文对照 | 第129-131页 |
| 致谢 | 第131-132页 |
| 作者简介 | 第132页 |
