| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| ·粮食作物产量现状以及改善策略 | 第10页 |
| ·植物光合作用 | 第10-11页 |
| ·C_4光合作用 | 第11-13页 |
| ·C_4植物高光合效率 | 第13-14页 |
| ·C_4植物花环型结构 | 第14-15页 |
| ·C_3植物进行C_4改造的尝试 | 第15-17页 |
| ·C_4光合模式植物的研究 | 第17-18页 |
| ·狐尾草作为研究C_4光合作用模式植物的优势 | 第18页 |
| ·研究的目的与意义 | 第18-20页 |
| 第二章 水生型大莎草形成花环型结构所需的胁迫条件 | 第20-29页 |
| ·材料与方法 | 第20-23页 |
| ·实验材料 | 第20页 |
| ·诱导条件下大莎草的培养种植 | 第20-21页 |
| ·大莎草石蜡组织切片 | 第21-22页 |
| ·大莎草叶绿素含量的测定 | 第22页 |
| ·大莎草PEPC、PPDK、NAD-ME酶活的测定 | 第22-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-27页 |
| ·胁迫条件下大莎草叶状茎的解剖结构 | 第23-26页 |
| ·大莎草叶绿素含量的测定 | 第26页 |
| ·大莎草PEPC、PPDK、NAD-ME酶活的测定 | 第26-27页 |
| ·讨论 | 第27-29页 |
| ·诱导条件下大莎草花环型结构的变化 | 第27-28页 |
| ·大莎草的研究价值 | 第28-29页 |
| 第三章 狐尾草遗传转化体系的探索 | 第29-52页 |
| ·材料与方法 | 第29-39页 |
| ·实验材料 | 第29页 |
| ·狐尾草种子的繁育 | 第29页 |
| ·菌株、载体及目的基因 | 第29-30页 |
| ·干涉载体构建 | 第30-33页 |
| ·表达载体转化至农杆菌 | 第33-34页 |
| ·农杆菌介导的狐尾草遗传转化 | 第34-38页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第38-39页 |
| ·狐尾草诱导培养基优化 | 第39页 |
| ·狐尾草石蜡组织切片制作 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-48页 |
| ·狐尾草植株花环型结构的形成过程 | 第39-40页 |
| ·狐尾草种子的繁育 | 第40-41页 |
| ·狐尾草愈伤组织遗传转化过程 | 第41-42页 |
| ·T0代转化植株的阳性检测 | 第42-43页 |
| ·狐尾草愈伤组织的瞬时转化 | 第43页 |
| ·狐尾草愈伤组织敏感性实验 | 第43-44页 |
| ·狐尾草愈伤组织遗传转化过程中遇到的问题 | 第44-45页 |
| ·诱导培养基的优化 | 第45-48页 |
| ·讨论 | 第48-52页 |
| ·本研究的创新之处 | 第48页 |
| ·本研究面临的挑战 | 第48-49页 |
| ·影响农杆菌介导狐尾草遗传转化效率的因素 | 第49-50页 |
| ·农杆菌介导狐尾草穗状花序的侵染 | 第50-51页 |
| ·展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 附录 | 第60-63页 |
| 致谢 | 第63页 |