摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-20页 |
·胶原蛋白肽的提取 | 第10-12页 |
·胶原蛋白肽的生物活性 | 第12-15页 |
·降血压活性肽的研究 | 第13页 |
·抗氧化活性肽的研究 | 第13-15页 |
·抗肿瘤以及其它活性的研究 | 第15页 |
·胶原蛋白肽的分离纯化及结构鉴定 | 第15-17页 |
·胶原蛋白肽的原料来源 | 第17-18页 |
·河豚鱼 | 第18-19页 |
·本课题研究的内容及意义 | 第19-20页 |
第二章 河豚鱼皮胶原蛋白肽的提取 | 第20-37页 |
·材料与方法 | 第20-28页 |
·实验材料 | 第20-22页 |
·原料 | 第20页 |
·主要实验仪器 | 第20-21页 |
·主要实验试剂 | 第21-22页 |
·实验方法 | 第22-28页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白的提取 | 第22页 |
·河豚鱼皮中总蛋白含量的测定 | 第22页 |
·河豚鱼皮中胶原蛋白含量的测定 | 第22-23页 |
·酶活力的测定 | 第23-25页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白水解液中肽得率的测定 | 第25-26页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白的酶解 | 第26-27页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽最佳提取条件的选择 | 第27页 |
·酶解液对羟自由基(OH·)的清除作用 | 第27-28页 |
·结果与讨论 | 第28-35页 |
·河豚鱼皮中总蛋白含量及胶原蛋白含量 | 第28页 |
·最佳提取酶的选择 | 第28-29页 |
·酶活力的测定 | 第28页 |
·四种蛋白酶的酶解效果的比较 | 第28-29页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽最佳提取条件的单因素实验 | 第29-34页 |
·酶加量对酶解反应的影响 | 第29-30页 |
·温度对酶解反应的影响 | 第30-31页 |
·底物浓度对酶解反应的影响 | 第31-32页 |
·pH对酶解反应的影响 | 第32-33页 |
·时间对酶解反应的影响 | 第33-34页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽最佳提取条件的正交实验结果 | 第34-35页 |
·小结 | 第35-37页 |
第三章 河豚鱼皮胶原蛋白肽抗氧化性的研究 | 第37-49页 |
·材料与方法 | 第37-40页 |
·实验材料 | 第37-39页 |
·主要实验仪器 | 第37-38页 |
·主要实验试剂 | 第38-39页 |
·实验方法 | 第39-40页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽的超滤 | 第39页 |
·对羟自由基(OH·)的清除作用 | 第39页 |
·对二苯代苦味酰自由基(DPPH·)的清除作用 | 第39页 |
·对超氧阴离子自由基O_2~-·的清除作用 | 第39-40页 |
·还原作用 | 第40页 |
·结果与讨论 | 第40-48页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽对OH·的清除作用 | 第40-42页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽对DPPH·的清除作用 | 第42-43页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽对O_2~-·的清除作用 | 第43-44页 |
·不同分子量的河豚鱼皮胶原蛋白肽对O_2~-·的清除作用 | 第43-44页 |
·分子量1kDa以下的河豚鱼皮胶原蛋白肽对O_2~-·清除作用 | 第44页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽的还原性 | 第44-45页 |
·关于河豚鱼皮胶原蛋白肽的抗氧化活性 | 第45-48页 |
·小结 | 第48-49页 |
第四章 河豚鱼皮抗氧化肽的分离纯化 | 第49-59页 |
·材料与方法 | 第49-51页 |
·实验材料 | 第49-50页 |
·主要实验仪器 | 第49-50页 |
·主要实验试剂 | 第50页 |
·实验方法 | 第50-51页 |
·抗氧化活性的测定方法 | 第50页 |
·超滤分离 | 第50页 |
·DEAE Sepharose CL-6B离子交换柱层析 | 第50页 |
·凝胶柱层析 | 第50-51页 |
·脱盐 | 第51页 |
·高效液相色谱 | 第51页 |
·结果与讨论 | 第51-57页 |
·DEAE Sepharose CL-6B离子交换柱层析 | 第51-52页 |
·Sephadex G-25凝胶柱层析 | 第52-55页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽纯化过程中抗氧化性的比较 | 第55-56页 |
·高效液相色谱分离 | 第56-57页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽A-Ⅱ的HPLC谱图 | 第56-57页 |
·河豚鱼皮胶原蛋白肽B-Ⅱ的HPLC谱图 | 第57页 |
·小结 | 第57-59页 |
第五章 结论 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
附录A Folin-酚溶液配制方法 | 第66-67页 |
附录B | 第67页 |