| 摘要 | 第1-17页 |
| ABSTRACT | 第17-21页 |
| 论文架构 | 第21-22页 |
| 第一章 绪论 | 第22-58页 |
| 引言 | 第22-23页 |
| ·荧光探针识别机理 | 第23-29页 |
| ·ICT的探针分子特点 | 第23-25页 |
| ·PET类探针分子特点 | 第25-27页 |
| ·FRET探针分子特点 | 第27-29页 |
| ·双光子荧光 | 第29-34页 |
| ·荧光成像技术的发展 | 第29-30页 |
| ·荧光光谱简介 | 第30-31页 |
| ·双光子原理 | 第31-34页 |
| ·双光子细胞膜探针 | 第34-41页 |
| ·细胞膜中金属离子的探测 | 第34-35页 |
| ·细胞膜内蛋白的检测 | 第35-36页 |
| ·细胞膜内脂筏的检测 | 第36-39页 |
| ·细胞膜中离子通道 | 第39-41页 |
| ·双光子性能的RNA探针 | 第41-44页 |
| ·双光子性能染料 | 第41-42页 |
| ·双光子核酸荧光探针的国内外研究现状 | 第42页 |
| ·双光子RNA荧光探针的研究现状 | 第42-43页 |
| ·RNA探针的种类 | 第43-44页 |
| ·论文研究的主要内容 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-58页 |
| 第二章 荧光探测细胞膜的有序相 | 第58-106页 |
| 引言 | 第58-60页 |
| ·实验材料 | 第60-62页 |
| ·材料 | 第60-61页 |
| ·仪器 | 第61页 |
| ·计算 | 第61-62页 |
| ·细胞 | 第62-64页 |
| ·细胞培养 | 第62页 |
| ·细胞成像 | 第62页 |
| ·探针的毒性实验 | 第62页 |
| ·囊泡 | 第62-63页 |
| ·小鼠肝组织获取和肝细胞的分离 | 第63-64页 |
| ·合成 | 第64-66页 |
| ·4,4’-Dibromo-2-nitrobiphenyl(1)的合成 | 第64页 |
| ·2,7-Dibromocarbazole(2)的合成 | 第64-65页 |
| ·2,7-dibromo-9-(2-ethoxyethyl)-9H-carbazole(3)的合成 | 第65页 |
| ·9-(2-ethoxyethyl)-2,7-bis((E)-2-(pyridin-4-yl)vinyl)-9H-carbazole(4)的合成 | 第65-66页 |
| ·2,7-bis(1-iodododecane -4-vinylpyridium iodine)-N-ethylcarbazole(HVC-12)的合成 | 第66页 |
| ·结果与讨论 | 第66-91页 |
| ·探针的设计 | 第66-68页 |
| ·溶剂中的光谱性质 | 第68-70页 |
| ·AIE特点 | 第70-76页 |
| ·探针HVC-12在囊泡中的光谱性质 | 第76-79页 |
| ·探针HVC-12在细胞膜Lo相和Ld相的识别研究 | 第79-87页 |
| ·探针HVC-12的光稳定性 | 第87-89页 |
| ·小鼠的肝组织成像 | 第89-91页 |
| ·探针HVC-18的合成 | 第91-92页 |
| ·2,7-Dibromo-9-octadecyl-9H-carbazole(1)的合成 | 第91-92页 |
| ·9-Octadecyl-2,7-bis-(2-pyridin-4-yl-vinyl)-9H-carbazole(2)的合成 | 第92页 |
| ·HVC-18的合成 | 第92页 |
| ·成像 | 第92-95页 |
| ·全波段扫描模式 | 第92-93页 |
| ·成像特征 | 第93-95页 |
| ·本章小结 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-106页 |
| 第三章 基于低分子量探针双光子荧光成像活细胞中核仁与细胞质内的RNA | 第106-139页 |
| 引言 | 第106-109页 |
| ·材料和方法 | 第109-111页 |
| ·材料 | 第109-110页 |
| ·测试仪器 | 第110-111页 |
| ·数据计算原理 | 第111-112页 |
| ·紫外-可见吸收光谱(Uv)与DNA/RNA浓度计算 | 第111页 |
| ·单光子光谱与荧光量子产率的计算 | 第111页 |
| ·双光子荧光光谱与双光子吸收截面 | 第111-112页 |
| ·合成路线 | 第112-113页 |
| ·合成步骤与表征 | 第113-115页 |
| ·N-(2-butyl/hexyl)-4-methylpyridinium iodide(1)的合成 | 第113页 |
| ·(E)-5-(2-(Pyridin-4-yl)vinyl)-1H-indole-3-carbaldehyde(3)的合成 | 第113-114页 |
| ·目标产物INR1/INR2的合成 | 第114-115页 |
| ·细胞培养 | 第115页 |
| ·细胞成像 | 第115-116页 |
| ·固定细胞的消化实验 | 第116页 |
| ·细胞活性实验 | 第116-117页 |
| ·结果与讨论 | 第117-133页 |
| ·探针的准备 | 第117页 |
| ·DNA与RNA的滴定 | 第117-121页 |
| ·圆二色(CD) | 第121-122页 |
| ·单光子荧光成像 | 第122-127页 |
| ·双光子荧光成像 | 第127-129页 |
| ·断层扫描实验 | 第129-131页 |
| ·探针INR1/INR2的优势 | 第131-133页 |
| ·本章结论 | 第133-134页 |
| 参考文献 | 第134-139页 |
| 第四章 基于咔唑类双离子盐的核糖核酸荧光探针的合成与细胞成像应用 | 第139-152页 |
| 引言 | 第139-140页 |
| ·材料和方法 | 第140-141页 |
| ·材料 | 第140页 |
| ·测试仪器 | 第140-141页 |
| ·DNA/RNA浓度计算 | 第141页 |
| ·合成与表征 | 第141页 |
| ·细胞成像 | 第141-142页 |
| ·细胞的培养 | 第141-142页 |
| ·细胞染色 | 第142页 |
| ·固定细胞的消化实验 | 第142页 |
| ·结果与讨论 | 第142-149页 |
| ·探针的准备 | 第142-143页 |
| ·溶剂化效应 | 第143-144页 |
| ·NA滴定试验 | 第144-146页 |
| ·单双光子荧光成像 | 第146-149页 |
| ·结论 | 第149-150页 |
| 参考文献 | 第150-152页 |
| 第五章 活细胞内线粒体的快速检测与追踪 | 第152-164页 |
| 引言 | 第152-153页 |
| ·结果与讨论 | 第153-161页 |
| ·溶剂化效应 | 第154-155页 |
| ·细胞的共定位 | 第155-156页 |
| ·活细胞线粒体的动态追踪 | 第156-159页 |
| ·探针的耐性研究 | 第159-160页 |
| ·双光子成像 | 第160-161页 |
| ·本章结论 | 第161-162页 |
| 参考文献 | 第162-164页 |
| 第六章 总结与展望 | 第164-169页 |
| ·总结 | 第164-166页 |
| ·展望 | 第166-168页 |
| ·启示 | 第168-169页 |
| 致谢 | 第169-170页 |
| 攻读博士学位期间发表论文 | 第170-172页 |
| 附录 | 第172-182页 |
| 附件 | 第182-193页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第193页 |
